核酸分子杂交定义具有一定互补序列的核苷酸单链在液相或固相中按碱基互补配对原则缔合成异质双链的过程叫核酸分子杂交。
种类按反应支持物可分为 固相杂交 和 液相杂交 两种：
固相杂交应用较广，包括 Southern blot、
Northern blot,Spot blot,in situ
hybridization等。
DNA Hybridization
De- and re-nature DNA DS using temperature variation
一,核酸探针制备及标记
核酸探针 （ probe） 是指能与特定核酸序列发生特异性互补的已知核酸片段,因而可检测样品中特定的基因序列 。
探针
根据核酸探针的来源及性质有双链 DNA,单链
DNA,单链 RNA和人工合成的寡核苷酸探针等 。
用于分子杂交的核酸探针均须进行标记,带有示踪物,与靶基因杂交后,才能检测显示出杂交体信号 。 标记物有 放射性同位素 和 非放射性同位素 两大类 。 3H,35S和 32P是三种较常用的放射性同位素标记物,非放射性同位素标记物较常用的是 生物素 （ biotin ）,地 高 辛
（ digoxigenin,DIG） 和 荧光素 等 。
(一 )缺口平移标记法（ Nick translation）
［ 原理 ］
在未标记的 DNA探针溶液中加入一定量的胰 DNA酶 Ⅰ （ DNaseⅠ ）,DNA聚合酶 Ⅰ 和标记的三磷酸核苷。 DNaseⅠ 在
DNA双链上随机切开若干个带有 3′-OH末端的单链缺口，而 DNA聚合酶 Ⅰ 发挥
5′→3′ 核酸外切酶活性从 5′-末端标记
切除单核苷酸；同时又具有从 5′→3′ 的聚合作用，将标记的三磷酸核苷按 5′→3′ 方向重新修补缺口，此新合成 DNA的两条链均匀地被掺人标记物。该法适合于各种环状或线性双链 DNA探针标记。
标记
［ 试剂 ］
1,10× 缺口平移缓冲液
0.5 mol/L Tris-Cl(pH7.2）
0.1 mol/L MgSO4
1.0 mmol/L 二硫苏糖醇 (DTT)
500 μg/ml 牛血清白蛋白 (BSA)
标记
2,未标记脱氧三磷酸核苷 （ dNTP） 溶液：
dTTP,dCTP,dGTP 溶于 50mmol/L Tris-Cl
( pH 7.2),终浓度为 20mmol/L。
3,DNaseⅠ （ 10ng/ml）,溶于含 50μg/ml BSA、
1mmol/L DTT,50%（ V/V） 乙二醇的溶液 。
4,DNA聚合酶 Ⅰ （ 5U/μl）,溶于 50mmol/L
Tris-Cl ( pH 7.2)。
5,[α-32P]dATP,3000Ci/mmol,10μCi/μl。
操作步骤
1,加样：冰浴下依次加入下列试剂并混匀：
10× 缺口平移缓冲液 2.5μl
未标记的 dNTP混合液 1.0μl
DNA（ 0.5~1μg) 5.0μl
[α-32P] dATP 5.0μl
DNaseⅠ （ 振荡混匀 ） 2.5μl
DNA聚合酶 Ⅰ （ 振荡混匀 ） 0.5μl
双蒸去离子水至体积 25μl
操作步骤
2,反应：于 14 ~ 16℃ 水浴 2~3小时 。 加 1μl
0,5mol/L EDTA（ pH8.0)终止反应 。
3,分离：标记完毕的反应液加至 TE缓冲液平衡的 Sephadex G-50 柱上 （ 柱 床 体 积 为
0.7× 30mm） 。 加样完毕后,用 TE缓冲液洗脱,
分管收集洗脱液,每管约 200μl。 再每管取 5 μl
点样于滤纸上液闪计数 。 主峰为纯化的标记探针,尾峰为未被结合的游离标记核苷酸 。 将主峰部分收集,— 20℃ 储存 。
操作步骤
4,结合率的计算：
主峰计数 （ CPM）
结合率 = x 100%
主峰计数 （ CPM） +尾峰计数 （ CPM）
一般结合率在 20 ~ 30%。
（二） 5′末端标记法
［ 原理 ］
DNA 5′末端的磷酸根,用碱性磷酸酶去磷酸化,
再用 T4多核苷酸激酶将 [ γ-32P ]ATP的 γ-32P转移到 DNA 5′端的羟基上 。
［试剂］
1,5× T4多核苷酸激酶缓冲液
0.5mol/L Tris-Cl(pH 7.6）
0.1mol/L MgCl2
50mmol/L DTT
1 mmol/L 精脒 （ Spermidine）
2,T4多核苷酸激酶溶液 （ 1U/μl）
3,碱性磷酸酶 （ 2 ~ 5U/ml）
操作步骤
1,DNA 去磷酸化：在 Eppendorf管内加 5μl
DNA,25μl 50mmol/L Tris-Cl(pH 8.0） 和 20μl
碱性磷酸酶,37℃ 反应 30 ~ 60分钟 。 然后用酸变性碱性磷酸酶,用乙醚提取 。 再加 1/10体积
3.0mol/L醋酸钠,用乙醇沉淀 。
2,将 0.1mCi [γ-32P]ATP放入小离心管,冻干 。
3,转 32P到 DNA上：在含有 [γ-32P]ATP的小离心管内,依次加入 38μl去磷酸的 DNA,10μl 多核苷酸激酶缓冲液,3 μl 多核苷酸激酶,在 37℃
反应 30 ~ 40分钟 。
4,分离：加等体积饱和酚,离心 5 ~ 10
分钟后,取上清液到另一个小离心管内,
再加 500μl乙醚,混匀,离心,弃去上层含有残留酚溶液,加 1/10体积 3.0mol/L
醋酸钠 。 然后加双倍体积冷乙醇混合在 -
70℃ 中 15分钟,或 -20℃ 中 2小时,沉淀
DNA。
操作步骤
（三）随机引物标记法
［ 原理 ］
随机引物是指含有各种可能排列组合顺序的寡核苷酸混合物。目前实验室中常用的随机引物多是人工合成，其长度为 6个核苷酸。标记的方法是将双链 DNA变性成单链 DNA，再与随机引物退火杂交，在四种脱氧三磷酸核苷存在下，
由大 DNA聚合酶大片段（ Klenow片段）催化，
从引物的 3′末端开始按 5′→3′ 方向合成与模板
DNA互补的 DNA链，如有 [α-32P]dNTP或其他示踪物的掺人，就可产生标记的 DNA探针。
［原理］
随机引物是指含有各种可能排列组合顺序的寡核苷酸混合物。目前实验室中常用的随机引物多是人工合成，其长度为 6个核苷酸。标记的方法是将双链 DNA变性成单链 DNA，再与随机引物退火杂交，在四种脱氧三磷酸核苷存在下，
由大 DNA聚合酶大片段（ Klenow片段）催化，
从引物的 3′末端开始按 5′→3′ 方向合成与模板
DNA互补的 DNA链，如有 [α-32P]dNTP或其他示踪物的掺人，就可产生标记的 DNA探针。
操作步骤
1,在 Eppendorf 管中,将 TE 溶解的
30~100ng 纯化的双链 DNA与 1 ~ 5ng随机引物混合 （ 总体积不超过 14μl）,置沸水中变性 3分钟,再立即置冰浴中冷却；
2,迅速离心 10秒，使溶液聚集于试管底部，冰浴中放置；
3,冰浴中在一微量离心管中依次加入下列试剂并混匀：
10× Klenow 缓冲液 2.5μl
10× dNTP 2.5μl
Klenow 片段 1.0μl
[α-32P]dCTP 5.0μl
4,将上述混合液加入到变性模板 DNA随机引物溶液中。
5,室温放置 3小时以上 。
操作步骤
6,加 1μl 0,5mol/L EDTA（ pH8.0)终止反应,并用 TE 缓冲液稀释反应液至
100μl,— 20℃ 保存备用 。
操作步骤
（四）光化生物素法
［ 原理 ］
光化生物素是一种化学合成的生物素衍生物，分子中含有可光照活化的叠氮代硝苯基，生成活泼 N基团，后者易与
DNA或 RNA中的伯胺基发生结合反应，
生成光化生物素标记核酸探针。
材料
1,光化生物素：在暗室中用灭菌双蒸水配成 1mg/ml,分装后,避光下 — 20℃ 可稳定保存 4 ~ 6个月 。
2,正丁醇或仲丁醇
3,特种光源,LYQ12-100卤钨灯操作步骤
1,暗室安全灯下，在 Eppendorf管中加入 1 ~
25μg待标记核酸（ 0.5 ~ 1.0μg/ml DNA或
RNA），两倍量的光化生物素（即 2 ~ 50μg），
补水至 50μl。将反应管敞开插入冰模中，距卤钨灯光源 10cm，强光照射 30分钟。加 100μl TE
缓冲液。此后操作在正常光线下。
2,加 100μl正丁醇 （ 或仲丁醇 ）,抽提两次,去上层正丁醇；
3,加 1/10体积 3mol/L醋酸钠 （ pH5.2） 和 2
倍体积冷无水乙醇,混匀后置 — 20℃ 过夜 。
4,离心的沉淀经干燥后,溶于适量的
0.1mol/L EDTA或灭菌双蒸水中,浓度为
50μg/ml,分装后 — 20℃ 避光保存 。
操作步骤
（五） DIG标记探针
DIG标记是德国 Boehringer Mannheim公司发展的 一 种 非 放 射 性 标 记 方 法 。 Digoxigenin-
11dUTP可以通过随机引物标记结合到 DNA探针或通过 DNA体外转录标记到 RNA探针,或通过 3′— 尾端标记结合到寡聚核苷酸探针 。 然后与抗地高辛抗体 （ anti— digonigenin alkaline
phosphatase） 进行免疫反应,通过化学呈色检测 。 DIG标记法与前述同位素酶促标记法基本相同 。
二,斑点杂交
［ 原理 ］
将 DNA或 RNA变性后直接点样吸附于固相支持滤膜上,然后用标记探针与之杂交,洗涤去除未反应探针,采用放射自显影或显色反应检测显示杂交信号,分析结果 。
本节主要介绍用 α-32 P标记 DNA探针及光化生物素标记 DNA探针检测 DNA与 RNA的斑点杂交方法 。
材料
1 器材
同位素探测仪
自动光密度扫描仪
真空抽滤加样器
X光胶片盒（带增感屏）
2,试剂
⑴ 20× SSC（ 3mol/L NaCl,0.3mol/L柠檬酸三钠 ）,称取 175.32g NaCl,加 700ml双蒸水,
充分溶解后,加 88.2g 柠檬酸三钠,溶解后加双蒸水至 1000ml,8磅高压灭菌 15分钟 。
⑵ 去离子甲酰胺：称取 11g离子交换树脂 （ Bio-
Bad AG 501-X8,20~25目 ） 与 110ml甲酰胺混合,室温下搅拌 30分钟,用 Waterman滤纸过滤
2次,分装后 — 20℃ 保存 。
⑶ 硫酸葡聚糖 （ 1mg/ml）,称取 1mg硫酸葡聚糖干粉,溶于 1ml灭菌水,— 20℃ 保存 。
⑷ 50× Denhardt溶液 （ 1%BSA,1% PVP-40、
1% Ficoll-400）,分别称取 1g BSA,1g PVP-
40（ 聚乙烯吡咯烷酮 ）,1g Ficoll-400（ 水溶性聚蔗糖 ）,用少量双蒸水溶解混合,加双蒸水至 100ml。 过滤除菌,— 20℃ 保存 。
2,试剂
⑸ 变性鲑鱼精 DNA（ 10mg/ml）,称取鲑鱼精
DNA（ Sigma,Ⅲ 型,钠盐 ） 10mg放入灭菌管中,加入 100mmol/L Tris-HCl,5mmol/L EDTA
缓冲液 1ml,用超声波处理至液体透亮,完全溶解,分装后 — 20℃ 保存 。 临用前置沸水浴中
3分钟,然后迅速在冰浴中冷却 。 预杂交液中应含 100μg/ml DNA经变性并打断的鲑鱼精
DNA。
⑹ 卵 白 素 - 碱 性 磷 酸 酶 （ Avidin-AKP,
100U/100μl）,以 0.4% Triton X-100 PBS液配制 。 使用液中 Avidin-AKP浓度为 1~2U/1ml。
2,试剂
⑺ 底物缓冲液,100mmol/L Tris-Cl（ pH9.5）,
1mol/L NaCl,5mmol/L MgCL2。
⑻ 底物显色液
1） 50mg/ml BCIP,10mgBCIP溶于 200μl二甲基酰胺 。
2） 75mg/ml NBT,15mg NBT溶于 200 μl 70%
二甲基酰胺 （ H2O配制 ） 。
3） 底物显色液,5ml 底物缓冲液 + 10μl BCIP
+ 10μl NBT
2,试剂操作步骤
㈠ α-32 P标记 DNA探针的斑点杂交
1,样膜的制备
(1),核酸样品的预变性
所取 DNA及 RNA样品的量视情况而定,
一般可加 10 ~ 20μg。
1） DNA样品：样品 DNA溶于水或 TE缓冲液,置沸水浴 5 ~ 10分钟,并于冰浴中迅速冷却,使其变性 。
2） RNA样品：在 Eppendorf 管加入下列试剂：
RNA样品 10 μl
20× SSC 2 μl
甲醛 7 μl
甲酰胺 20 μl
混匀置 68 ℃ 温育 15分钟,并迅速入冰浴中至少 5分钟 。
操作步骤
(2) 尼龙膜的预处理：戴上干净手套,取尼龙膜按需要剪成合适大小,并剪掉一角作为点样顺序标记 。 如采用手工点样,
用铅笔在尼龙膜上按 0.8 ~ 1cm2的面积标上小格 。 用蒸馏水浸湿,再浸入 6× SSC
溶液中至少 30分钟,将膜取出自然凉干后待用 。
操作步骤
(3)点样
可根据情况选用手工直接点样或用真空抽滤加样器点样 。
点样
1)手工直接点样：用微量移液器将经变性处理的核酸样品依次点到尼龙膜的标记点上 。 斑点直径不要过大,应控制在
0.5cm2以内 。 单个样品分少量多次点样,
边点样边风干 。
点样
2)斑点 （ 狭缝 ） 真空抽滤加样器点样,① 常规方法清洗加样器后,用 0.1mol/L NaOH清洗点样器,灭菌三蒸水充分冲洗,如为 RNA样品则还应用 DEPC处理的水充分冲洗 。 ② 将尼龙膜湿润后覆盖在加样器支持垫上 （ 或为预先湿润的滤纸 ）,小心排除气泡,尼龙膜覆盖不到的部分需用 Parafilm膜封闭；重新安装好加样器,
接通真空泵 。 ③ 加样孔内加满 10× SSC,真空抽滤至所有液体被抽干；关闭真空泵,然后重复抽滤一次 。
点样
④ 上述经预变性处理的样品中加入 2倍体积 20× SSC,分别加至各孔,真空抽滤 。
⑤ 待全部液体抽干后,再加 10× SSC抽滤两次 。 待 10× SSC抽干后再维持真空 5分钟,使尼龙膜干燥 。
点样
(4)固定：点样后的样膜，置滤纸上，室温自然干燥，然后 80℃ 烘烤 2小时固定核酸样品。固定的样膜封存于塑料袋内待用（ — 20℃ 可保存若干月）。
2,预杂交
(1)配制预杂交液：终浓度为 6× SSC,50%去离子甲酰胺,5× Denhardt液,0.5mg/ml鲑鱼精
DNA和 0.5% SDS。
(2)将封存样膜的塑料袋剪一斜角开口,加少量的 2× SSC使其湿润,弃余液 。 按 150 ~ 200μl/
cm2膜,加入预杂交液,去除袋内气泡,熔封塑料袋斜角开口处 。 将此塑料袋置恒温摇床或杂交炉中,42℃ 温育 2 ~ 4小时 。
3,杂交
(1)探针变性,α-32P标记的探针如为双链 DNA,则需经变性处理 。 将标记好的探针置沸水浴中 5分钟,然后迅速置冰浴中 。
(2)配制杂交液：终浓度为 6× SSC,50%去离子甲酰胺,
5× Denhardt液,0.1mg/ml鲑鱼精 DNA,0.5% SDS和放射性同位素探针 0.5ng/μl。
杂交
(3)杂交：从水浴中取出塑料袋,剪去一角,弃预杂 交液,加入杂交 液 （ 按
80μl/cm2 膜 ） 及 α-32P标记探针 。 小心排除气泡,重新封好口 。 为防止污染,应将塑料袋外再套另一塑料袋 。 将杂交袋置恒温摇床或杂交炉中,42℃ 温育 16 ~
20小时 。
4,洗膜
杂交温育结束后,剪开杂交袋一角,将杂交液倒入放射性废物容器中,剪开袋取出膜,放进装有 2× SSC— 0.1%SDS的盘中,室温摇晃漂洗
5分钟 。 根据需要选择不同方法洗膜,去除非特异性的同位素 。
洗膜
(1)高严谨性漂洗：依次按下列条件漂洗：
2× SSC— 0.1% SDS室温,2× 15分钟；
0.1× SSC— 0.1% SDS室温,2× 15分钟；
0.1× SSC— 0.1% SDS 55℃,2× 15分钟；
洗膜
(2)低严谨性漂洗：依次按下列条件漂洗：
6× SSC— 0.1%SDS室温,2× 15分钟；
2× SSC— 0.1% SDS室温,2× 15分钟；
1× SSC— 0.1% SDS 55℃,2× 15分钟 。
5,放射性自显影
样膜经漂洗后,置干净滤纸上,吸去膜上多余水分,外面裹一层保险膜 。 暗室安全灯下,在胶盒中压上 2张 X光胶片,样膜上下各 1张,盖上胶片盒 — 80℃ 放射自显影 。 时间视杂交强度而定,24小时 ~10天不等 。 取出胶片盒,恢复至室温 。 按常规冲洗 X光片：显影 1 ~ 5分钟,停显 1分钟,定影 5分钟,流动水冲洗 10分钟,自然干燥 。
6,结果观察
根据曝光点 （ 或狭缝 ） 的有无,强弱,
可以判定目的基因的有无及量的多少 。
利用 "自动灰度扫描仪 "扫描曝光点 （ 狭缝 ）,计算积分光密度值,可以进行半定量分析 。
（二）光敏生物素标记 DNA探针的点杂交
1,样膜的制备
按 α-32 P标记 DNA探针的斑点杂交方法进行 。
2,预杂交
按 α-32 P标记 DNA探针的斑点杂交方法进行 。
预杂交液中各组份的终浓度为,5× SSC,50%
去离 子甲 酰胺,5× Denhardt 液,50mmol/L
Na2HPO4 （ pH7.0 ）,5mmol/L EDTA,
0.5mg/ml鲑鱼精 DNA。
3,杂交
(1)探针变性：将标记的光化生物素 DNA
探针加入 0.5ml Eppendorf管中,置沸水中
5 ~ 10分钟,立即置于冰浴中,使保持单链状态 。
杂交
(2)配制杂交液：各组分终浓度为 5× SSC、
50% 去离子甲酰胺,1× Denhardt 液,
20mmol/L Na2HPO4（ pH7.0）,5%硫酸葡聚糖,0.1mg/ml鲑鱼精 DNA,光敏生物素标记 DNA探针 20 ~ 100ng/ml组成 。
杂交
(3)杂交：参见 α-32 P 标记 DNA探针的斑点杂交 。
4,洗膜
取出样膜置含 2× SSC— 0.1%SDS溶液中漂洗 5分钟。再按下列条件洗膜：
2× SSC— 0.1%SDS 100ml，室温,3× 20
分钟； 0.1× SSC— 0.1%SDS 100ml，
65℃,3× 30分钟；将样膜置干净滤纸上，
室温自然干燥，封入塑料袋内（不立即显色可存放于 — 20℃ 至少 1个月）。
5,显色
(1)封闭：将 3%BSA溶液加入塑料袋内,
于 42℃ 温育封闭 1小时 。
显色
(2)酶联显色反应：弃封闭液,再加入适当稀释的 Avidin-AKP,置室温 15 ~ 30分钟,不时轻微振荡 。 随后依次按下列条件洗膜,100mmol/L Tris-HCl（ pH7.5）,
1mol/L NaCl ； 100mmol/L Tris-HCl
（ pH9.5 ）,1mol/L NaCl,5mmol/L
MgCl2。 将膜转入新塑料袋中,加入新配制的底物显色液,在暗环境中室温下显色,时间 15 ~ 60分钟 。
6,结果判定
出现蓝紫色斑点 （ 狭缝 ） 者为阳性,未着色为阴性 。 根据着色的深浅可以判定目的基因的多少 。
三,Sourthern印迹杂交
[原理 ]
Sourthern印迹杂交是分析 DNA的一种方法,从细胞或组织中提取高分子量的 DNA,用一种或多种限制性内切酶消化,通过琼脂糖凝胶电泳按大小分离所得片段,从凝胶中按原来位置和顺序吸印转移到固相支持膜 （ 硝酸纤维素膜或尼龙膜 ） 上,然后再与同位素或非同位素标记探针杂交,最后经放射自显影或显色反应进行检测 。
以 α-32 P标记 DNA探针检测 DNA为例，
介绍 Sourthern印迹杂交方法。
材料
（ 一 ） 器材
同位素探测仪
自动光密度扫描仪
真空核酸转移装置
紫外照相装置
X光胶片盒 （ 带增感屏 ）
（ 二 ） 试剂及配制
1,0.2mol/L HCl
2,变性液,0.5mol/L NaOH
1.5mol/L NaCl
3,中和液,1mol/L Tris-Cl（ pH7.4）
1.5mol/L NaCl
4,转移液,20× SSC；或 20× SSPE
5,1mol/L Tris-Cl（ pH7.5） — 1.5mol/L NaCl
操作步骤
（ 一 ） 琼脂糖凝胶电泳分离基因组 DNA限制性酶切片段
1,在灭菌 Eppendorf管中依次加入下列试剂并混匀 （ 以常用的 30μl反应体积为例 ）,
0.5μg /μl基因组 DNA 20μl
双蒸去离子水 5μl
10× 缓冲液 3μl
限制性内切酶 （ 10U/μl） 2μl
2,12 000g 离心数秒,使管壁上的液珠离心至管底,以保证反应体系体积准确 。
3,置 37℃ 水浴保温 3~6小时 。
4,加入 1/5体积的 0.5mol/L EDTA终止反应 。
5,依常规方法进行 DNA的琼脂糖凝胶电泳 。
（ 二 ） DNA的转移与固定
基因组 DNA经限制性内切酶消化和琼脂糖凝胶电泳后,可将 DNA从凝胶中转移至固相支持膜上,方法主要有毛细管洗脱法及真空转移法 。
1,毛细管洗脱法
（ 1） 电泳结束后照相,然后切去凝胶的边角作为标记 。
（ 2） 将胶置于 0.2mol /L HCl中处理 10
分钟,如果检测的 DNA片段 < 1kb,可不经此步；如果 >1kb,可适当延长时间
（ 10~20分钟 ） 。 当胶中溴酚蓝由蓝转成桔黄时,说明胶已处理完成 。
（ 3） 弃去 HCl溶液,用去离子水漂洗 2次 。 随后浸泡于数倍体积的变性液中 15~45分钟后
（ 此时溴酚蓝重新变为蓝色 ）,换用中和液处理 15~30分钟 。
（ 4） 取一瓷盘,加入转移液,上置一块略大于凝胶的玻璃板作为平台,玻璃板表面铺一张新华二号滤纸,滤纸的两边浸没在转移液中,
去除玻璃板与滤纸之间的所有大小气泡 。
（ 5） 根据胶的大小载剪固相支持膜及滤纸片 （ 3~5张 ）,同样剪去膜的一角作标志 （ 也可用铅笔在膜下端写上有关资料,
如时间,样品及所用酶等 ） 。
（ 6） 将膜平铺在去离子水表面,直到滤膜从下到上湿透为止,然后将其转至转移液中,至少 5分钟 。 操作时戴手套,用平头镊 。
（ 7）将经转移液浸泡的滤纸片 1 ~ 2张铺到转移台上，驱逐气泡。倒上少许转移液，用大小适合的薄塑料板将胶从中和液中托起，将加样孔先接触转移台，自一端起将胶滑放到滤纸上，
注意不要留下气泡。将浸泡好的膜放在胶上，
使膜的上端对齐加样孔。放上 2 ~ 3层预先浸泡过转移液的滤纸片，放上吸水纸堆至 10 ~ 15cm
高，上面加一块平板，然后压上 0.5kg左右的重物。
（ 8） 转移持续 8 ~ 24小时,每当纸巾浸湿后更换新的纸巾 。 小片段转移快,大片段转移需要时间较长 。
（ 9） 转移完毕,移去吸水纸,用平头镊将膜取出,在 6× SSC溶液中浸泡滤膜 5分钟,用滤纸印吸干后,夹在两层干净滤纸片中,置于 80℃ 烤 0.5 ~ 2小时 。 封入塑料袋中保存备用 。
2,真空转移法
（ 1） 安装真空转移装置
1)根据胶的大小做好塑料膜窗口，其大小略小于凝胶，每边应有 3 ~ 10mm的重合，让胶将窗口严密地封住。但不能大于 10mm，否则加入液体后，胶容易漂起来。
2)将多孔滤板安放在装置的下槽内,四边套紧气密圈,再放上塑料膜窗口 。
3)将上框放上,压住窗口塑料膜的四边,
夹紧四角上的锁定夹 。
（ 2） 依次放上转移膜及琼脂糖凝胶
1)膜的准备：将硝酸纤维素膜或尼龙膜裁剪成每边少于窗口边缘 0.5 ~ 1.0mm。
2)用水浸湿,再用 20× SSC漂浮转移膜 20 ~ 30
分钟,尼龙膜可不预处理 。
3)将膜放在窗口内,务使每边留下 1mm左右的空隙 。
4)用一张大小合适的薄塑料片托住凝胶,将加样孔与窗口对齐平放,然后使胶滑落在膜上,
覆盖住窗口 。
5)启动真空泵,使凝胶吸压在膜和塑料窗口上,检查密封效果 。
（ 3）脱嘌呤处理：用巴氏吸管加
0.2mol /L HCl于凝胶上，使覆盖整个凝胶，使真空泵负压在 20 ~ 30Mbar维持 10
~ 20分钟，至溴酚蓝完全变色为止。吸去凝胶上面的 HCl。
（ 4） 变性处理：同法加入变性液覆盖整块凝胶,使真空泵负压在 20~30Mbar维持
10 ~ 20分钟,至溴酚蓝颜色完全复原为止 。 吸去凝胶上面的变性液 。
（ 5） 中和处理：同法加入中和液覆盖整块凝胶,使真空泵负压在 20 ~ 30Mbar维持 10 ~ 20分钟,吸去凝胶上面的中和液 。
（ 6） 转移：从凝胶中央小心加入 20× SSC溶液,
直至覆盖住整块凝胶,液面最好达 2倍凝胶的厚度 。 真空负压为 50 ~ 55Mbar,转移时间依照凝胶的厚度,浓度而定,凝胶的厚度和浓度越高,所需时间越长,一般持续转移 30 ~ 60分钟 。
（ 7） 固定：转移结束,依次移去上框,
剩余的 20× SSC,凝胶及真空垫圈,取出转移膜,不要浸泡或冲洗,转移面朝上放在滤纸上晾干 。 将膜夹在两层滤纸中间,80℃ 干烤固定 1 ~ 2小时,封入塑料袋中保存备用 。
（ 三 ） 预杂交,杂交,洗膜,放射自显影和结果分析
按 α-32 P标记 DNA探针的斑点杂交方法进行 。
Diagnosis of Sickle-Cell Anemia
四,Northern印迹杂交技术
[原理 ]
Northern 印迹杂交的基本原理是将 RNA样品通过变性琼脂糖凝胶电泳进行分离,再转移到尼龙膜等固相膜载体上,用放射性同位素标记的
DNA或 RNA特异探针对固定于膜上的 mRNA进行杂交,洗膜去除非特异性杂交信号,经放射自显影,对杂交信号进行分析 。 将杂交的
mRNA在电泳中的迁移位置与标准分子量进行比较,即可知道细胞中特定的基因转录产物的大小,对杂交信号的强弱比较,可了解该基因表达 mRNA的强弱 。
以甲醛琼脂糖变性胶电泳分离 RNA,介绍
RNA Northern印迹杂交 。
[材料 ]
（ 一 ） 器材
同位素探测仪
自动光密度扫描仪
真空核酸转移
紫外照相装置
X光胶片盒 （ 带增感屏 ）
（ 二 ） 试剂及配制
1,5× 甲醛电泳缓冲液
0.1mol/L 3-[N- 玛琳 ] （ N-
morpholinc]propane-sulfonic acid,MOPS）
（ pH7.0）
25mmol/L NaAC
5mmol/L EDTA（ pH8.0）
将 20.9g MOPS溶于 800 ml经 0.1%焦炭酸二乙脂 （ DEPC ） 处理的水中,加 8.3ml
3mol/L 乙酸钠,20ml 0.5mol EDTA
(pH8.0),用 DEPC处理的水定容至 1L，
0.2μm微孔滤膜过滤除菌,避光保存于
4℃ 。 溶液见光变为深黄色不能再用 。
2,甲醛凝胶加样缓冲液
50% 甘油
1mmol/L EDTA（ pH8.0)
0.25% 溴酚蓝
0.25% 二甲苯青 FF
用 0.1 % DEPC 37℃ 处理过夜,高压灭菌,保存于室温 。
3,溴化乙锭溶液
0.5μg/ml 溴化乙锭
0.1 mol/L 乙酸铵
[方法 ]
（ 一 ） 甲醛变性电泳分离 RNA样品
1,电泳槽的无 RNA酶处理：电泳槽用去污剂洗干净,蒸馏水冲洗,无水乙醇漂洗干净,3% H2O2处理 10分钟,最后用
DEPC处理过的三蒸水冲洗数遍 。
2,配制 1%琼脂糖变性胶：
5× 甲醛电泳缓冲液 20ml
0.1%DEPC水 80ml
琼脂糖 1g
加热至胶完全溶化后,冷却至 60℃,加入 5.4ml 37%甲醛,混匀并置通风橱内,
将凝胶倾倒入电泳槽上,于室温放置 30
分钟或更长时间,使凝胶凝固 。
3,RNA样品处理
在 Eppendorf 管中加入下列试剂：
RNA样品 9 μ l
5× 甲醛电泳缓冲液 4 μl
甲醛 7 μl
甲酰胺 20μ l
总体积 40μ l，混匀后 65 ℃ 温育 15分钟，
并迅速置冰浴中至少 5分钟。 5000g离心 5
秒使管内所有液体集中于管底。加 4μl
甲醛凝胶加样缓冲液混合待用。
4,电泳：制备的凝胶先预电泳 5分钟,再将样品加至凝胶加样孔中,同时加入已知大小的
RNA混合物作为分子量标准参照物,按 3 ~
4V/cm电压进行电泳 。 电泳过程中,每隔 1 ~ 2
小时,将正负极槽内液体混合后继续电泳 。
5,电泳结果观察：电泳结束后 （ 溴酚蓝迁移出约 7 ~ 8cm）,切下分子量标准参照物的凝胶条,浸入溴化乙锭溶液中染色 30 ~ 45分钟 。 在凝胶旁放置一透明尺,
在紫外灯下照相,便于以后测量照片上每个 RNA条带至加样孔的距离 。 以 RNA
片段大小的对数值对 RNA条带的迁移距离作图,绘制标准曲线,根据标准曲线计算杂交后所检出的 RNA分子的大小 。
（二）变性 RNA转移至尼龙膜
上述经甲醛琼脂糖变性凝胶电泳分离的 RNA样品，应尽快转移至尼龙膜上，
方法主要有毛细管洗脱法及真空转移法。
1,毛细管洗脱法
（ 1） 凝胶的预处理：将凝胶移至一个干烤过的平皿内,将边缘多余部分用眼科解剖刀切去,在加样孔一侧切去一角作凝胶方位标记 。 并用经 DEPC处理的三蒸水淋洗数次,除去甲醛 。
（ 2） 取一瓷盘,加入 20 × SSC溶液,上置一块略大于凝胶的玻璃板作为平台,
玻璃板表面铺一张新华二号滤纸,滤纸的两边浸没在 20× SSC溶液中,去除玻璃板与滤纸之间的所有气泡 。
（ 3） 把凝胶底向上翻转覆盖在滤纸上,
去除二层之间出现的气泡 。 用保鲜膜围绕在凝胶周边,但不覆盖凝胶,作为屏障以阻止液体自池边直接流至凝胶上方的纸巾中 。
（ 4） 裁剪一张尼龙膜,其长与宽大于凝胶 1 ~ 1.5cm,并剪下一角做记号以定滤膜方位 。 先将膜在 20× SSC中至少润湿
20分钟,然后放置在凝胶表面上,二层之间不可有气泡存在 。
（ 5）将两张与尼龙膜一样大小经 20× SSC溶液润湿过的滤纸，覆盖在尼龙膜上，去除气泡。
（ 6）把一叠约 5 ~ 10cm高同滤纸大小一样的吸水纸放置在滤纸上，在吸水纸上再放一块玻璃板和约 500g的重物。
（ 7） 上述程序就绪,RNA转移即开始进行,
需持续 18 ~ 24小时 。 如果吸水纸过于潮湿,应换新的吸水纸 。
（ 8）转移结束后，揭去凝胶上方的吸水纸和滤纸，取出尼龙膜，不必冲洗、浸泡，转移面朝上置一张滤纸上晾干。将膜夹在两张滤纸中间,80℃ 干烤固定 1 ~
2小时，封入塑料袋中保存待用。
2,真空转移法
（ 1） 凝胶的预处理：具体程序同毛细管洗脱法 。
（ 2） 真空转移槽预处理：常规去污剂清洗,三蒸水漂洗数次,再用 DEPC处理的三蒸水冲洗数次后备用 。
（ 3） 在转移槽的支持网上置放经 2×
SSC湿润过的新华二号滤膜二张,去除支持网与滤膜间的气泡 。
（ 4） 裁剪一张尼龙膜,每边应比凝胶大 1 ~ 1.5cm,于 2× SSC中浸泡 20分钟,
平放在滤纸上,去除所有气泡 。
（ 5） 选取合适大小的真空垫圈 （ 每边略小于凝胶 1 ~ 1.5cm）,覆盖住尼龙膜,调整尼龙膜的位置,使其处于真空垫圈的中间 。
（ 6） 将凝胶放置到真空垫圈上,检查凝胶四边,要与垫圈严密重叠 。 排除所有气泡 。
（ 7） 加上上框,固定真空垫圈 。 打开真空泵,
调整到 6 ~ 13kPa的压力 。
（ 8） 小心加入 20× SSC溶液覆盖凝胶,
持续转移 3小时 。
（ 9）转移结束，依次移去上框、剩余的 20× SSC、凝胶及真空垫圈，取出尼龙膜，不要浸泡或冲洗，转移面朝上放在滤纸上晾干。将膜夹在两层滤纸中间，
80℃ 干烤固定 1 ~ 2小时，封入塑料袋中保存待用。
（ 三 ） 预杂交,杂交,洗膜和放射自显影
按 α-32 P 标记 DNA探针的斑点杂交方法进行 。
（四）分析结果：根据曝光显示的条带，
对照 RNA分子量标准参照物条带的迁移距离图，即可查出凝胶电泳中相应的
RNA位置，从而知道基因转录的 RNA的大小。利用自动光密度扫描仪扫描曝光的条带，计算条带的积分光密度值，以内参照 RNA条带的积分光密度为校正值，
可以确定不同样品基因转录的表达强度。
五,原位杂交
[原理 ]
原位杂交 （ in situ hybridization,ISH） 是将分子杂交与组织化学相结合的一项技术,也称原位 杂 交 组 织 化 学 （ in situ hybridization
histochemistry,ISSH） 。 它是利用标记的 DNA
或 RNA为探针,在组织,细胞及染色体上检测特异的 DNA或 RNA序列的杂交技术 。 其基本原理是含互补顺序的标记 DNA或 RNA片段即探针,
在适宜的条件下与细胞内特定的 DNA或 RNA形成稳定的杂交体。根据所用的探针和靶核酸的不同，原位杂交可分为 DNA-DNA杂交,DNA-
RNA杂交和 RNA-RNA杂交三类。根据探针的标记物是否能直接被检测，原位杂交又可分为直接法和间接法两类。直接法指用放射性同位素、荧光素或一些酶标记的探针与组织细胞内靶核酸所形成的杂交体可分别通过放射自显影、
荧光显微术或显色的酶促反应等直接检测 。 间接法指用半抗原标记探针,而探针与组织细胞内靶核酸形成的杂交体则通过免疫组织化学法对半抗原的定位间接地显示 。
本节主要介绍用 α-32P标记 DNA探针检测冰冻组织切片中 DNA及以地高辛标记 DNA探针检测石蜡包埋组织切片中 DNA的原位杂交方法 。
[试剂 ]
1,0.2mol/L HCL,1.72ml 浓 HCL,加
ddH2O至 100ml。
2,0.2%Triton X-100 — 0.1mol/L PBS,
1000ml 0.1mol/L PBS 液中加入 Triton X-100
2ml,混匀,高压灭菌 。
3,蛋白酶 K溶液,
1 mol/L Tris-HCl（ pH 8.0） 10ml
0.5mol/L EDTA ( pH 8.0） 10ml
加灭菌水至 100ml
使用前加入蛋白酶 K储存液 （ 0.5mg/ml,-20℃
保存 ）,使蛋白酶 K的终浓度为 1μg/ml 。
4,4%多聚甲醛 — 0.1mol/L PBS(pH 7.4)：称取 40g多聚甲醛,置于三角烧瓶中,加入 500 ~
800 ml 0.1mol/L PBS (pH 7.4）,加热至 60℃ 左右,持续搅拌使粉末完全溶解,常需滴加少许
1mol/L NaOH才能使溶液清亮,再加 0.1mol/L
PBS至 1000 ml,充分混匀 。
5,预杂交液
50%去离子甲酰胺
2× SSC
10%硫酸葡聚糖
5× Denhardt溶液
0.5mg/ml变性鲑鱼精 DNA
6,α-32P标记的 DNA探针
7,地高辛标记的 DNA探针
8,缓冲液 Ⅰ,
顺丁烯二酸 （ 马来酸 ） 0.1 mol/L
NaCL 0.15 mol/L
用 10mol/L NaOH将 pH调至 7.5（ 20℃ ）,
高压灭菌后备用 。
9,缓冲液 Ⅱ
先制备阻断剂储存液；取试剂盒中阻断剂按 10%（ W/V)加入缓冲液 Ⅰ,混匀,
用微波炉加热使其完全溶解,高压消毒后 4℃ 或 -20℃ 保存 。 取上述 10%的阻断剂储存液用缓冲液 Ⅰ 按 1,10稀释即制成缓冲液 Ⅱ 。
10,缓冲液 Ⅲ [ pH9.5（ 20℃ ） ]
Tris-Cl 100mmol/L
NaCl 100mmol/L
MgCl2 50mmol/L
11,缓冲液 Ⅳ [pH8.0(20℃ )]
Tris-Cl 10mmol/L
EDTA 1 mmol/L
12,底物显色液
缓冲液 Ⅲ 15ml + 52..5μl BCIP + 67.5μl NBT
[α-32P标记 DNA探针的原位杂交 ]
（ 一 ） 冰冻切片预处理
1,新鲜取材组织置液氮冷冻的异戊烷中 。
2,恒冷箱切片 （ 2 ~ 15μm）,置预处理的玻片上 。
3,4%多聚甲醛室温下固定 15 ~ 60分钟 。
4,PBS洗 2× 10分钟,43℃ 烤片过夜 。
5,0.2mol/L HCl 室温作用 10分钟,
0.1%~0.3%Triton X-100作用 15 ~ 30分钟 。
6,0.2%甘氨酸的 PBS室温作用 10分钟 。
7,蛋白酶 K 1μg/ml 37℃ 孵育 15 ~ 30分钟 。
8,0.2%甘氨酸的 PBS室温作用 10分钟 。
9,PBS-5mmol/L MgCl2洗 2× 10分钟 。
10,逐级酒精脱水,空气干燥或直接
37℃ 烤干保存 。
（ 二 ） 预杂交
1,切片用 2× SSC 浸泡 15分钟 。 再用
4× SSC 配制 （ V/V） 的 50%去离子甲酰胺 37℃ 孵育 15分钟 。
2,每张切片加预杂交液 20μl,杂交温度下 （ 如 42℃ ） 孵育 30分钟 ~ 2小时 。
（ 三 ） 杂交
吸弃预杂交液,每张切片加杂交液 20μl
（ 含 0.5ng/μl α-32P标记 DNA探针 ）,加盖硅化的盖玻片 。 玻片放置湿盒中,
95℃ ~100℃ 变性 10分钟 。 取出反应盒,
立即入冷水中放置 15分钟,再转入 42℃
温箱中杂交 12 ~ 18 小时,不要超过 24小时 。
（ 四 ） 洗涤
杂交完毕,于 2× SSC溶液中轻轻去除盖玻片 。
2× SSC洗涤,室温,1~ 2 分钟；
1× SSC — 50%去离子甲酰胺洗涤,
37℃,2× 10分钟；
0.1× SSC 洗涤,40℃,2× 30分钟 。
（ 五 ） 同位素标记探针显色法
1,暗室中将分装的核乳胶溶液 （ 约
10ml） 小瓶置 45 ℃ 水浴中浸泡至少 1小时,
使核乳胶完全熔成液态 。
2,组织切片垂直浸入熔化的核乳胶液中 1分钟,使核乳胶均匀流布在标本上
（ 垂直进入和垂直提出的速度要均匀,
提出后拭去背面及下端的核乳胶 ） 。
3,暗室中切片于 45℃ 电热板上,干燥 1
~ 2小时 。
4,切片装入暗盒内,周围以胶带封固,
4℃ 曝光 （ 3H标记探针 2 ~ 8周,35S标记探针 1 ~ 4周,32P标记探针 7~10天 ） 。
5,取出切片暗盒,室温放置至少 1小时 （ 勿启封 ）,使其缓慢回升至室温 。
6,在暗室中 （ 可留安全灯 ） 将切片置入
Kodax19显影液 3 ~ 5分钟,水冲洗片刻后,
置 Kodax F24定影液中 3 ~ 5分钟 （ 水温,
显影液及定影液温度最好为 18 ~ 20℃ ） 。
7,自来水冲洗载片 15 ~ 20分钟后,以
1%苏木精染液染 5 ~ 10分钟 。
8,盐酸酒精中提插 2下,再用自来水冲洗 5 ~ 10分钟返蓝 。
9,0.5% ~ 1%伊红染液复染 1分钟；
70%,80%,95%,100%系列乙醇脱水；
二甲苯透明,树脂胶封片,光镜检查 。
（ 六 ） 观察结果
阳性标记物呈黑色颗粒位于蓝染的细胞核或红染的细胞质内 。
[地高辛标记 DNA探针的原位杂交 ]
（ 一 ） 石蜡组织切片预处理
1,43℃ 烤片过夜,75℃ 烤 10分钟熔化石蜡。趁热浸入 37℃ 二甲苯中 30分钟，
再转入新鲜二甲苯中 10分钟。逐级酒精入水（ 100%,95%,,90%,80%,,
70%各 5分钟 ），再用甲醇洗 2 × 5分钟 。
2,0.2mol/L HCl 室温作用 10分钟,0.1%
~ 0.3%Triton X-100作用 15 ~ 30分钟,含
0.2%甘氨酸的 PBS室温作用 15分钟 。
3,1μg/ml蛋白酶 K 37℃ 孵育 15 ~ 30分钟 。
含 0.2%甘氨酸的 PBS室温作用 10分钟 。
PBS-5mmol/L MgCl2洗 2× 10分钟 。
4,4%多聚甲醛室温下固定 15分钟 。 PBS-
5mmol/L MgCl2洗 2× 15分钟 。
5,逐级酒精脱水 （ 70%,80%,90%,95%、
100%各 5分钟 ）,空气干燥或直接 37℃ 烘干保存 。
（ 二 ） 预杂交,杂交
参见 α-32P标记 DNA探针的原位杂交,只是地高辛标记探针的浓度为 2.5ng/μl。
（ 三 ） 洗涤
杂交完毕,于 2× SSC溶液中轻轻去除盖玻片 。
2× SSC洗涤,室温,1~ 2 分钟；
2× SSC 洗涤,40℃,4× 5分钟；
0.1× SSC洗涤,40℃,2× 30分钟；
缓冲液 Ⅰ 洗涤,室温 2分钟,振摇；
缓冲液 Ⅱ 洗涤，室温 30分钟，振摇。
（ 四 ） 信号检测
1,擦去组织周围的缓冲液,加碱性磷酸酶标记的抗地高辛抗体 （ 工作浓度为 1,500~1：
5000,用缓冲液 Ⅱ 稀释 ） 室温下孵育 2小时 。
Boehringer Mannheim提供的抗体,孵育时可在抗体中加 1%的正常羊血清,以减低背景 。
2,缓冲液 Ⅰ 洗涤,室温,2× 15分钟 。
3,缓冲液 Ⅲ 洗涤,室温,3分钟 。
4,擦去组织周围的缓冲液,加显色液,
室温下避光显色 2小时至过夜 。 可在显微镜下检查显色反应,阳性反应呈深兰色 。
当获得满意的反应结果后,即可终止反应 。
5、缓冲液 Ⅰ 洗涤，室温,5分钟。
6,缓冲液 Ⅳ 洗涤,室温,2分钟 。
7,封片,光镜检查 。
（ 六 ） 观察结果
在细胞核或细胞浆内出现蓝紫色杂交信号为阳性 。
种类按反应支持物可分为 固相杂交 和 液相杂交 两种：
固相杂交应用较广，包括 Southern blot、
Northern blot,Spot blot,in situ
hybridization等。
DNA Hybridization
De- and re-nature DNA DS using temperature variation
一,核酸探针制备及标记
核酸探针 （ probe） 是指能与特定核酸序列发生特异性互补的已知核酸片段,因而可检测样品中特定的基因序列 。
探针
根据核酸探针的来源及性质有双链 DNA,单链
DNA,单链 RNA和人工合成的寡核苷酸探针等 。
用于分子杂交的核酸探针均须进行标记,带有示踪物,与靶基因杂交后,才能检测显示出杂交体信号 。 标记物有 放射性同位素 和 非放射性同位素 两大类 。 3H,35S和 32P是三种较常用的放射性同位素标记物,非放射性同位素标记物较常用的是 生物素 （ biotin ）,地 高 辛
（ digoxigenin,DIG） 和 荧光素 等 。
(一 )缺口平移标记法（ Nick translation）
［ 原理 ］
在未标记的 DNA探针溶液中加入一定量的胰 DNA酶 Ⅰ （ DNaseⅠ ）,DNA聚合酶 Ⅰ 和标记的三磷酸核苷。 DNaseⅠ 在
DNA双链上随机切开若干个带有 3′-OH末端的单链缺口，而 DNA聚合酶 Ⅰ 发挥
5′→3′ 核酸外切酶活性从 5′-末端标记
切除单核苷酸；同时又具有从 5′→3′ 的聚合作用，将标记的三磷酸核苷按 5′→3′ 方向重新修补缺口，此新合成 DNA的两条链均匀地被掺人标记物。该法适合于各种环状或线性双链 DNA探针标记。
标记
［ 试剂 ］
1,10× 缺口平移缓冲液
0.5 mol/L Tris-Cl(pH7.2）
0.1 mol/L MgSO4
1.0 mmol/L 二硫苏糖醇 (DTT)
500 μg/ml 牛血清白蛋白 (BSA)
标记
2,未标记脱氧三磷酸核苷 （ dNTP） 溶液：
dTTP,dCTP,dGTP 溶于 50mmol/L Tris-Cl
( pH 7.2),终浓度为 20mmol/L。
3,DNaseⅠ （ 10ng/ml）,溶于含 50μg/ml BSA、
1mmol/L DTT,50%（ V/V） 乙二醇的溶液 。
4,DNA聚合酶 Ⅰ （ 5U/μl）,溶于 50mmol/L
Tris-Cl ( pH 7.2)。
5,[α-32P]dATP,3000Ci/mmol,10μCi/μl。
操作步骤
1,加样：冰浴下依次加入下列试剂并混匀：
10× 缺口平移缓冲液 2.5μl
未标记的 dNTP混合液 1.0μl
DNA（ 0.5~1μg) 5.0μl
[α-32P] dATP 5.0μl
DNaseⅠ （ 振荡混匀 ） 2.5μl
DNA聚合酶 Ⅰ （ 振荡混匀 ） 0.5μl
双蒸去离子水至体积 25μl
操作步骤
2,反应：于 14 ~ 16℃ 水浴 2~3小时 。 加 1μl
0,5mol/L EDTA（ pH8.0)终止反应 。
3,分离：标记完毕的反应液加至 TE缓冲液平衡的 Sephadex G-50 柱上 （ 柱 床 体 积 为
0.7× 30mm） 。 加样完毕后,用 TE缓冲液洗脱,
分管收集洗脱液,每管约 200μl。 再每管取 5 μl
点样于滤纸上液闪计数 。 主峰为纯化的标记探针,尾峰为未被结合的游离标记核苷酸 。 将主峰部分收集,— 20℃ 储存 。
操作步骤
4,结合率的计算：
主峰计数 （ CPM）
结合率 = x 100%
主峰计数 （ CPM） +尾峰计数 （ CPM）
一般结合率在 20 ~ 30%。
（二） 5′末端标记法
［ 原理 ］
DNA 5′末端的磷酸根,用碱性磷酸酶去磷酸化,
再用 T4多核苷酸激酶将 [ γ-32P ]ATP的 γ-32P转移到 DNA 5′端的羟基上 。
［试剂］
1,5× T4多核苷酸激酶缓冲液
0.5mol/L Tris-Cl(pH 7.6）
0.1mol/L MgCl2
50mmol/L DTT
1 mmol/L 精脒 （ Spermidine）
2,T4多核苷酸激酶溶液 （ 1U/μl）
3,碱性磷酸酶 （ 2 ~ 5U/ml）
操作步骤
1,DNA 去磷酸化：在 Eppendorf管内加 5μl
DNA,25μl 50mmol/L Tris-Cl(pH 8.0） 和 20μl
碱性磷酸酶,37℃ 反应 30 ~ 60分钟 。 然后用酸变性碱性磷酸酶,用乙醚提取 。 再加 1/10体积
3.0mol/L醋酸钠,用乙醇沉淀 。
2,将 0.1mCi [γ-32P]ATP放入小离心管,冻干 。
3,转 32P到 DNA上：在含有 [γ-32P]ATP的小离心管内,依次加入 38μl去磷酸的 DNA,10μl 多核苷酸激酶缓冲液,3 μl 多核苷酸激酶,在 37℃
反应 30 ~ 40分钟 。
4,分离：加等体积饱和酚,离心 5 ~ 10
分钟后,取上清液到另一个小离心管内,
再加 500μl乙醚,混匀,离心,弃去上层含有残留酚溶液,加 1/10体积 3.0mol/L
醋酸钠 。 然后加双倍体积冷乙醇混合在 -
70℃ 中 15分钟,或 -20℃ 中 2小时,沉淀
DNA。
操作步骤
（三）随机引物标记法
［ 原理 ］
随机引物是指含有各种可能排列组合顺序的寡核苷酸混合物。目前实验室中常用的随机引物多是人工合成，其长度为 6个核苷酸。标记的方法是将双链 DNA变性成单链 DNA，再与随机引物退火杂交，在四种脱氧三磷酸核苷存在下，
由大 DNA聚合酶大片段（ Klenow片段）催化，
从引物的 3′末端开始按 5′→3′ 方向合成与模板
DNA互补的 DNA链，如有 [α-32P]dNTP或其他示踪物的掺人，就可产生标记的 DNA探针。
［原理］
随机引物是指含有各种可能排列组合顺序的寡核苷酸混合物。目前实验室中常用的随机引物多是人工合成，其长度为 6个核苷酸。标记的方法是将双链 DNA变性成单链 DNA，再与随机引物退火杂交，在四种脱氧三磷酸核苷存在下，
由大 DNA聚合酶大片段（ Klenow片段）催化，
从引物的 3′末端开始按 5′→3′ 方向合成与模板
DNA互补的 DNA链，如有 [α-32P]dNTP或其他示踪物的掺人，就可产生标记的 DNA探针。
操作步骤
1,在 Eppendorf 管中,将 TE 溶解的
30~100ng 纯化的双链 DNA与 1 ~ 5ng随机引物混合 （ 总体积不超过 14μl）,置沸水中变性 3分钟,再立即置冰浴中冷却；
2,迅速离心 10秒，使溶液聚集于试管底部，冰浴中放置；
3,冰浴中在一微量离心管中依次加入下列试剂并混匀：
10× Klenow 缓冲液 2.5μl
10× dNTP 2.5μl
Klenow 片段 1.0μl
[α-32P]dCTP 5.0μl
4,将上述混合液加入到变性模板 DNA随机引物溶液中。
5,室温放置 3小时以上 。
操作步骤
6,加 1μl 0,5mol/L EDTA（ pH8.0)终止反应,并用 TE 缓冲液稀释反应液至
100μl,— 20℃ 保存备用 。
操作步骤
（四）光化生物素法
［ 原理 ］
光化生物素是一种化学合成的生物素衍生物，分子中含有可光照活化的叠氮代硝苯基，生成活泼 N基团，后者易与
DNA或 RNA中的伯胺基发生结合反应，
生成光化生物素标记核酸探针。
材料
1,光化生物素：在暗室中用灭菌双蒸水配成 1mg/ml,分装后,避光下 — 20℃ 可稳定保存 4 ~ 6个月 。
2,正丁醇或仲丁醇
3,特种光源,LYQ12-100卤钨灯操作步骤
1,暗室安全灯下，在 Eppendorf管中加入 1 ~
25μg待标记核酸（ 0.5 ~ 1.0μg/ml DNA或
RNA），两倍量的光化生物素（即 2 ~ 50μg），
补水至 50μl。将反应管敞开插入冰模中，距卤钨灯光源 10cm，强光照射 30分钟。加 100μl TE
缓冲液。此后操作在正常光线下。
2,加 100μl正丁醇 （ 或仲丁醇 ）,抽提两次,去上层正丁醇；
3,加 1/10体积 3mol/L醋酸钠 （ pH5.2） 和 2
倍体积冷无水乙醇,混匀后置 — 20℃ 过夜 。
4,离心的沉淀经干燥后,溶于适量的
0.1mol/L EDTA或灭菌双蒸水中,浓度为
50μg/ml,分装后 — 20℃ 避光保存 。
操作步骤
（五） DIG标记探针
DIG标记是德国 Boehringer Mannheim公司发展的 一 种 非 放 射 性 标 记 方 法 。 Digoxigenin-
11dUTP可以通过随机引物标记结合到 DNA探针或通过 DNA体外转录标记到 RNA探针,或通过 3′— 尾端标记结合到寡聚核苷酸探针 。 然后与抗地高辛抗体 （ anti— digonigenin alkaline
phosphatase） 进行免疫反应,通过化学呈色检测 。 DIG标记法与前述同位素酶促标记法基本相同 。
二,斑点杂交
［ 原理 ］
将 DNA或 RNA变性后直接点样吸附于固相支持滤膜上,然后用标记探针与之杂交,洗涤去除未反应探针,采用放射自显影或显色反应检测显示杂交信号,分析结果 。
本节主要介绍用 α-32 P标记 DNA探针及光化生物素标记 DNA探针检测 DNA与 RNA的斑点杂交方法 。
材料
1 器材
同位素探测仪
自动光密度扫描仪
真空抽滤加样器
X光胶片盒（带增感屏）
2,试剂
⑴ 20× SSC（ 3mol/L NaCl,0.3mol/L柠檬酸三钠 ）,称取 175.32g NaCl,加 700ml双蒸水,
充分溶解后,加 88.2g 柠檬酸三钠,溶解后加双蒸水至 1000ml,8磅高压灭菌 15分钟 。
⑵ 去离子甲酰胺：称取 11g离子交换树脂 （ Bio-
Bad AG 501-X8,20~25目 ） 与 110ml甲酰胺混合,室温下搅拌 30分钟,用 Waterman滤纸过滤
2次,分装后 — 20℃ 保存 。
⑶ 硫酸葡聚糖 （ 1mg/ml）,称取 1mg硫酸葡聚糖干粉,溶于 1ml灭菌水,— 20℃ 保存 。
⑷ 50× Denhardt溶液 （ 1%BSA,1% PVP-40、
1% Ficoll-400）,分别称取 1g BSA,1g PVP-
40（ 聚乙烯吡咯烷酮 ）,1g Ficoll-400（ 水溶性聚蔗糖 ）,用少量双蒸水溶解混合,加双蒸水至 100ml。 过滤除菌,— 20℃ 保存 。
2,试剂
⑸ 变性鲑鱼精 DNA（ 10mg/ml）,称取鲑鱼精
DNA（ Sigma,Ⅲ 型,钠盐 ） 10mg放入灭菌管中,加入 100mmol/L Tris-HCl,5mmol/L EDTA
缓冲液 1ml,用超声波处理至液体透亮,完全溶解,分装后 — 20℃ 保存 。 临用前置沸水浴中
3分钟,然后迅速在冰浴中冷却 。 预杂交液中应含 100μg/ml DNA经变性并打断的鲑鱼精
DNA。
⑹ 卵 白 素 - 碱 性 磷 酸 酶 （ Avidin-AKP,
100U/100μl）,以 0.4% Triton X-100 PBS液配制 。 使用液中 Avidin-AKP浓度为 1~2U/1ml。
2,试剂
⑺ 底物缓冲液,100mmol/L Tris-Cl（ pH9.5）,
1mol/L NaCl,5mmol/L MgCL2。
⑻ 底物显色液
1） 50mg/ml BCIP,10mgBCIP溶于 200μl二甲基酰胺 。
2） 75mg/ml NBT,15mg NBT溶于 200 μl 70%
二甲基酰胺 （ H2O配制 ） 。
3） 底物显色液,5ml 底物缓冲液 + 10μl BCIP
+ 10μl NBT
2,试剂操作步骤
㈠ α-32 P标记 DNA探针的斑点杂交
1,样膜的制备
(1),核酸样品的预变性
所取 DNA及 RNA样品的量视情况而定,
一般可加 10 ~ 20μg。
1） DNA样品：样品 DNA溶于水或 TE缓冲液,置沸水浴 5 ~ 10分钟,并于冰浴中迅速冷却,使其变性 。
2） RNA样品：在 Eppendorf 管加入下列试剂：
RNA样品 10 μl
20× SSC 2 μl
甲醛 7 μl
甲酰胺 20 μl
混匀置 68 ℃ 温育 15分钟,并迅速入冰浴中至少 5分钟 。
操作步骤
(2) 尼龙膜的预处理：戴上干净手套,取尼龙膜按需要剪成合适大小,并剪掉一角作为点样顺序标记 。 如采用手工点样,
用铅笔在尼龙膜上按 0.8 ~ 1cm2的面积标上小格 。 用蒸馏水浸湿,再浸入 6× SSC
溶液中至少 30分钟,将膜取出自然凉干后待用 。
操作步骤
(3)点样
可根据情况选用手工直接点样或用真空抽滤加样器点样 。
点样
1)手工直接点样：用微量移液器将经变性处理的核酸样品依次点到尼龙膜的标记点上 。 斑点直径不要过大,应控制在
0.5cm2以内 。 单个样品分少量多次点样,
边点样边风干 。
点样
2)斑点 （ 狭缝 ） 真空抽滤加样器点样,① 常规方法清洗加样器后,用 0.1mol/L NaOH清洗点样器,灭菌三蒸水充分冲洗,如为 RNA样品则还应用 DEPC处理的水充分冲洗 。 ② 将尼龙膜湿润后覆盖在加样器支持垫上 （ 或为预先湿润的滤纸 ）,小心排除气泡,尼龙膜覆盖不到的部分需用 Parafilm膜封闭；重新安装好加样器,
接通真空泵 。 ③ 加样孔内加满 10× SSC,真空抽滤至所有液体被抽干；关闭真空泵,然后重复抽滤一次 。
点样
④ 上述经预变性处理的样品中加入 2倍体积 20× SSC,分别加至各孔,真空抽滤 。
⑤ 待全部液体抽干后,再加 10× SSC抽滤两次 。 待 10× SSC抽干后再维持真空 5分钟,使尼龙膜干燥 。
点样
(4)固定：点样后的样膜，置滤纸上，室温自然干燥，然后 80℃ 烘烤 2小时固定核酸样品。固定的样膜封存于塑料袋内待用（ — 20℃ 可保存若干月）。
2,预杂交
(1)配制预杂交液：终浓度为 6× SSC,50%去离子甲酰胺,5× Denhardt液,0.5mg/ml鲑鱼精
DNA和 0.5% SDS。
(2)将封存样膜的塑料袋剪一斜角开口,加少量的 2× SSC使其湿润,弃余液 。 按 150 ~ 200μl/
cm2膜,加入预杂交液,去除袋内气泡,熔封塑料袋斜角开口处 。 将此塑料袋置恒温摇床或杂交炉中,42℃ 温育 2 ~ 4小时 。
3,杂交
(1)探针变性,α-32P标记的探针如为双链 DNA,则需经变性处理 。 将标记好的探针置沸水浴中 5分钟,然后迅速置冰浴中 。
(2)配制杂交液：终浓度为 6× SSC,50%去离子甲酰胺,
5× Denhardt液,0.1mg/ml鲑鱼精 DNA,0.5% SDS和放射性同位素探针 0.5ng/μl。
杂交
(3)杂交：从水浴中取出塑料袋,剪去一角,弃预杂 交液,加入杂交 液 （ 按
80μl/cm2 膜 ） 及 α-32P标记探针 。 小心排除气泡,重新封好口 。 为防止污染,应将塑料袋外再套另一塑料袋 。 将杂交袋置恒温摇床或杂交炉中,42℃ 温育 16 ~
20小时 。
4,洗膜
杂交温育结束后,剪开杂交袋一角,将杂交液倒入放射性废物容器中,剪开袋取出膜,放进装有 2× SSC— 0.1%SDS的盘中,室温摇晃漂洗
5分钟 。 根据需要选择不同方法洗膜,去除非特异性的同位素 。
洗膜
(1)高严谨性漂洗：依次按下列条件漂洗：
2× SSC— 0.1% SDS室温,2× 15分钟；
0.1× SSC— 0.1% SDS室温,2× 15分钟；
0.1× SSC— 0.1% SDS 55℃,2× 15分钟；
洗膜
(2)低严谨性漂洗：依次按下列条件漂洗：
6× SSC— 0.1%SDS室温,2× 15分钟；
2× SSC— 0.1% SDS室温,2× 15分钟；
1× SSC— 0.1% SDS 55℃,2× 15分钟 。
5,放射性自显影
样膜经漂洗后,置干净滤纸上,吸去膜上多余水分,外面裹一层保险膜 。 暗室安全灯下,在胶盒中压上 2张 X光胶片,样膜上下各 1张,盖上胶片盒 — 80℃ 放射自显影 。 时间视杂交强度而定,24小时 ~10天不等 。 取出胶片盒,恢复至室温 。 按常规冲洗 X光片：显影 1 ~ 5分钟,停显 1分钟,定影 5分钟,流动水冲洗 10分钟,自然干燥 。
6,结果观察
根据曝光点 （ 或狭缝 ） 的有无,强弱,
可以判定目的基因的有无及量的多少 。
利用 "自动灰度扫描仪 "扫描曝光点 （ 狭缝 ）,计算积分光密度值,可以进行半定量分析 。
（二）光敏生物素标记 DNA探针的点杂交
1,样膜的制备
按 α-32 P标记 DNA探针的斑点杂交方法进行 。
2,预杂交
按 α-32 P标记 DNA探针的斑点杂交方法进行 。
预杂交液中各组份的终浓度为,5× SSC,50%
去离 子甲 酰胺,5× Denhardt 液,50mmol/L
Na2HPO4 （ pH7.0 ）,5mmol/L EDTA,
0.5mg/ml鲑鱼精 DNA。
3,杂交
(1)探针变性：将标记的光化生物素 DNA
探针加入 0.5ml Eppendorf管中,置沸水中
5 ~ 10分钟,立即置于冰浴中,使保持单链状态 。
杂交
(2)配制杂交液：各组分终浓度为 5× SSC、
50% 去离子甲酰胺,1× Denhardt 液,
20mmol/L Na2HPO4（ pH7.0）,5%硫酸葡聚糖,0.1mg/ml鲑鱼精 DNA,光敏生物素标记 DNA探针 20 ~ 100ng/ml组成 。
杂交
(3)杂交：参见 α-32 P 标记 DNA探针的斑点杂交 。
4,洗膜
取出样膜置含 2× SSC— 0.1%SDS溶液中漂洗 5分钟。再按下列条件洗膜：
2× SSC— 0.1%SDS 100ml，室温,3× 20
分钟； 0.1× SSC— 0.1%SDS 100ml，
65℃,3× 30分钟；将样膜置干净滤纸上，
室温自然干燥，封入塑料袋内（不立即显色可存放于 — 20℃ 至少 1个月）。
5,显色
(1)封闭：将 3%BSA溶液加入塑料袋内,
于 42℃ 温育封闭 1小时 。
显色
(2)酶联显色反应：弃封闭液,再加入适当稀释的 Avidin-AKP,置室温 15 ~ 30分钟,不时轻微振荡 。 随后依次按下列条件洗膜,100mmol/L Tris-HCl（ pH7.5）,
1mol/L NaCl ； 100mmol/L Tris-HCl
（ pH9.5 ）,1mol/L NaCl,5mmol/L
MgCl2。 将膜转入新塑料袋中,加入新配制的底物显色液,在暗环境中室温下显色,时间 15 ~ 60分钟 。
6,结果判定
出现蓝紫色斑点 （ 狭缝 ） 者为阳性,未着色为阴性 。 根据着色的深浅可以判定目的基因的多少 。
三,Sourthern印迹杂交
[原理 ]
Sourthern印迹杂交是分析 DNA的一种方法,从细胞或组织中提取高分子量的 DNA,用一种或多种限制性内切酶消化,通过琼脂糖凝胶电泳按大小分离所得片段,从凝胶中按原来位置和顺序吸印转移到固相支持膜 （ 硝酸纤维素膜或尼龙膜 ） 上,然后再与同位素或非同位素标记探针杂交,最后经放射自显影或显色反应进行检测 。
以 α-32 P标记 DNA探针检测 DNA为例，
介绍 Sourthern印迹杂交方法。
材料
（ 一 ） 器材
同位素探测仪
自动光密度扫描仪
真空核酸转移装置
紫外照相装置
X光胶片盒 （ 带增感屏 ）
（ 二 ） 试剂及配制
1,0.2mol/L HCl
2,变性液,0.5mol/L NaOH
1.5mol/L NaCl
3,中和液,1mol/L Tris-Cl（ pH7.4）
1.5mol/L NaCl
4,转移液,20× SSC；或 20× SSPE
5,1mol/L Tris-Cl（ pH7.5） — 1.5mol/L NaCl
操作步骤
（ 一 ） 琼脂糖凝胶电泳分离基因组 DNA限制性酶切片段
1,在灭菌 Eppendorf管中依次加入下列试剂并混匀 （ 以常用的 30μl反应体积为例 ）,
0.5μg /μl基因组 DNA 20μl
双蒸去离子水 5μl
10× 缓冲液 3μl
限制性内切酶 （ 10U/μl） 2μl
2,12 000g 离心数秒,使管壁上的液珠离心至管底,以保证反应体系体积准确 。
3,置 37℃ 水浴保温 3~6小时 。
4,加入 1/5体积的 0.5mol/L EDTA终止反应 。
5,依常规方法进行 DNA的琼脂糖凝胶电泳 。
（ 二 ） DNA的转移与固定
基因组 DNA经限制性内切酶消化和琼脂糖凝胶电泳后,可将 DNA从凝胶中转移至固相支持膜上,方法主要有毛细管洗脱法及真空转移法 。
1,毛细管洗脱法
（ 1） 电泳结束后照相,然后切去凝胶的边角作为标记 。
（ 2） 将胶置于 0.2mol /L HCl中处理 10
分钟,如果检测的 DNA片段 < 1kb,可不经此步；如果 >1kb,可适当延长时间
（ 10~20分钟 ） 。 当胶中溴酚蓝由蓝转成桔黄时,说明胶已处理完成 。
（ 3） 弃去 HCl溶液,用去离子水漂洗 2次 。 随后浸泡于数倍体积的变性液中 15~45分钟后
（ 此时溴酚蓝重新变为蓝色 ）,换用中和液处理 15~30分钟 。
（ 4） 取一瓷盘,加入转移液,上置一块略大于凝胶的玻璃板作为平台,玻璃板表面铺一张新华二号滤纸,滤纸的两边浸没在转移液中,
去除玻璃板与滤纸之间的所有大小气泡 。
（ 5） 根据胶的大小载剪固相支持膜及滤纸片 （ 3~5张 ）,同样剪去膜的一角作标志 （ 也可用铅笔在膜下端写上有关资料,
如时间,样品及所用酶等 ） 。
（ 6） 将膜平铺在去离子水表面,直到滤膜从下到上湿透为止,然后将其转至转移液中,至少 5分钟 。 操作时戴手套,用平头镊 。
（ 7）将经转移液浸泡的滤纸片 1 ~ 2张铺到转移台上，驱逐气泡。倒上少许转移液，用大小适合的薄塑料板将胶从中和液中托起，将加样孔先接触转移台，自一端起将胶滑放到滤纸上，
注意不要留下气泡。将浸泡好的膜放在胶上，
使膜的上端对齐加样孔。放上 2 ~ 3层预先浸泡过转移液的滤纸片，放上吸水纸堆至 10 ~ 15cm
高，上面加一块平板，然后压上 0.5kg左右的重物。
（ 8） 转移持续 8 ~ 24小时,每当纸巾浸湿后更换新的纸巾 。 小片段转移快,大片段转移需要时间较长 。
（ 9） 转移完毕,移去吸水纸,用平头镊将膜取出,在 6× SSC溶液中浸泡滤膜 5分钟,用滤纸印吸干后,夹在两层干净滤纸片中,置于 80℃ 烤 0.5 ~ 2小时 。 封入塑料袋中保存备用 。
2,真空转移法
（ 1） 安装真空转移装置
1)根据胶的大小做好塑料膜窗口，其大小略小于凝胶，每边应有 3 ~ 10mm的重合，让胶将窗口严密地封住。但不能大于 10mm，否则加入液体后，胶容易漂起来。
2)将多孔滤板安放在装置的下槽内,四边套紧气密圈,再放上塑料膜窗口 。
3)将上框放上,压住窗口塑料膜的四边,
夹紧四角上的锁定夹 。
（ 2） 依次放上转移膜及琼脂糖凝胶
1)膜的准备：将硝酸纤维素膜或尼龙膜裁剪成每边少于窗口边缘 0.5 ~ 1.0mm。
2)用水浸湿,再用 20× SSC漂浮转移膜 20 ~ 30
分钟,尼龙膜可不预处理 。
3)将膜放在窗口内,务使每边留下 1mm左右的空隙 。
4)用一张大小合适的薄塑料片托住凝胶,将加样孔与窗口对齐平放,然后使胶滑落在膜上,
覆盖住窗口 。
5)启动真空泵,使凝胶吸压在膜和塑料窗口上,检查密封效果 。
（ 3）脱嘌呤处理：用巴氏吸管加
0.2mol /L HCl于凝胶上，使覆盖整个凝胶，使真空泵负压在 20 ~ 30Mbar维持 10
~ 20分钟，至溴酚蓝完全变色为止。吸去凝胶上面的 HCl。
（ 4） 变性处理：同法加入变性液覆盖整块凝胶,使真空泵负压在 20~30Mbar维持
10 ~ 20分钟,至溴酚蓝颜色完全复原为止 。 吸去凝胶上面的变性液 。
（ 5） 中和处理：同法加入中和液覆盖整块凝胶,使真空泵负压在 20 ~ 30Mbar维持 10 ~ 20分钟,吸去凝胶上面的中和液 。
（ 6） 转移：从凝胶中央小心加入 20× SSC溶液,
直至覆盖住整块凝胶,液面最好达 2倍凝胶的厚度 。 真空负压为 50 ~ 55Mbar,转移时间依照凝胶的厚度,浓度而定,凝胶的厚度和浓度越高,所需时间越长,一般持续转移 30 ~ 60分钟 。
（ 7） 固定：转移结束,依次移去上框,
剩余的 20× SSC,凝胶及真空垫圈,取出转移膜,不要浸泡或冲洗,转移面朝上放在滤纸上晾干 。 将膜夹在两层滤纸中间,80℃ 干烤固定 1 ~ 2小时,封入塑料袋中保存备用 。
（ 三 ） 预杂交,杂交,洗膜,放射自显影和结果分析
按 α-32 P标记 DNA探针的斑点杂交方法进行 。
Diagnosis of Sickle-Cell Anemia
四,Northern印迹杂交技术
[原理 ]
Northern 印迹杂交的基本原理是将 RNA样品通过变性琼脂糖凝胶电泳进行分离,再转移到尼龙膜等固相膜载体上,用放射性同位素标记的
DNA或 RNA特异探针对固定于膜上的 mRNA进行杂交,洗膜去除非特异性杂交信号,经放射自显影,对杂交信号进行分析 。 将杂交的
mRNA在电泳中的迁移位置与标准分子量进行比较,即可知道细胞中特定的基因转录产物的大小,对杂交信号的强弱比较,可了解该基因表达 mRNA的强弱 。
以甲醛琼脂糖变性胶电泳分离 RNA,介绍
RNA Northern印迹杂交 。
[材料 ]
（ 一 ） 器材
同位素探测仪
自动光密度扫描仪
真空核酸转移
紫外照相装置
X光胶片盒 （ 带增感屏 ）
（ 二 ） 试剂及配制
1,5× 甲醛电泳缓冲液
0.1mol/L 3-[N- 玛琳 ] （ N-
morpholinc]propane-sulfonic acid,MOPS）
（ pH7.0）
25mmol/L NaAC
5mmol/L EDTA（ pH8.0）
将 20.9g MOPS溶于 800 ml经 0.1%焦炭酸二乙脂 （ DEPC ） 处理的水中,加 8.3ml
3mol/L 乙酸钠,20ml 0.5mol EDTA
(pH8.0),用 DEPC处理的水定容至 1L，
0.2μm微孔滤膜过滤除菌,避光保存于
4℃ 。 溶液见光变为深黄色不能再用 。
2,甲醛凝胶加样缓冲液
50% 甘油
1mmol/L EDTA（ pH8.0)
0.25% 溴酚蓝
0.25% 二甲苯青 FF
用 0.1 % DEPC 37℃ 处理过夜,高压灭菌,保存于室温 。
3,溴化乙锭溶液
0.5μg/ml 溴化乙锭
0.1 mol/L 乙酸铵
[方法 ]
（ 一 ） 甲醛变性电泳分离 RNA样品
1,电泳槽的无 RNA酶处理：电泳槽用去污剂洗干净,蒸馏水冲洗,无水乙醇漂洗干净,3% H2O2处理 10分钟,最后用
DEPC处理过的三蒸水冲洗数遍 。
2,配制 1%琼脂糖变性胶：
5× 甲醛电泳缓冲液 20ml
0.1%DEPC水 80ml
琼脂糖 1g
加热至胶完全溶化后,冷却至 60℃,加入 5.4ml 37%甲醛,混匀并置通风橱内,
将凝胶倾倒入电泳槽上,于室温放置 30
分钟或更长时间,使凝胶凝固 。
3,RNA样品处理
在 Eppendorf 管中加入下列试剂：
RNA样品 9 μ l
5× 甲醛电泳缓冲液 4 μl
甲醛 7 μl
甲酰胺 20μ l
总体积 40μ l，混匀后 65 ℃ 温育 15分钟，
并迅速置冰浴中至少 5分钟。 5000g离心 5
秒使管内所有液体集中于管底。加 4μl
甲醛凝胶加样缓冲液混合待用。
4,电泳：制备的凝胶先预电泳 5分钟,再将样品加至凝胶加样孔中,同时加入已知大小的
RNA混合物作为分子量标准参照物,按 3 ~
4V/cm电压进行电泳 。 电泳过程中,每隔 1 ~ 2
小时,将正负极槽内液体混合后继续电泳 。
5,电泳结果观察：电泳结束后 （ 溴酚蓝迁移出约 7 ~ 8cm）,切下分子量标准参照物的凝胶条,浸入溴化乙锭溶液中染色 30 ~ 45分钟 。 在凝胶旁放置一透明尺,
在紫外灯下照相,便于以后测量照片上每个 RNA条带至加样孔的距离 。 以 RNA
片段大小的对数值对 RNA条带的迁移距离作图,绘制标准曲线,根据标准曲线计算杂交后所检出的 RNA分子的大小 。
（二）变性 RNA转移至尼龙膜
上述经甲醛琼脂糖变性凝胶电泳分离的 RNA样品，应尽快转移至尼龙膜上，
方法主要有毛细管洗脱法及真空转移法。
1,毛细管洗脱法
（ 1） 凝胶的预处理：将凝胶移至一个干烤过的平皿内,将边缘多余部分用眼科解剖刀切去,在加样孔一侧切去一角作凝胶方位标记 。 并用经 DEPC处理的三蒸水淋洗数次,除去甲醛 。
（ 2） 取一瓷盘,加入 20 × SSC溶液,上置一块略大于凝胶的玻璃板作为平台,
玻璃板表面铺一张新华二号滤纸,滤纸的两边浸没在 20× SSC溶液中,去除玻璃板与滤纸之间的所有气泡 。
（ 3） 把凝胶底向上翻转覆盖在滤纸上,
去除二层之间出现的气泡 。 用保鲜膜围绕在凝胶周边,但不覆盖凝胶,作为屏障以阻止液体自池边直接流至凝胶上方的纸巾中 。
（ 4） 裁剪一张尼龙膜,其长与宽大于凝胶 1 ~ 1.5cm,并剪下一角做记号以定滤膜方位 。 先将膜在 20× SSC中至少润湿
20分钟,然后放置在凝胶表面上,二层之间不可有气泡存在 。
（ 5）将两张与尼龙膜一样大小经 20× SSC溶液润湿过的滤纸，覆盖在尼龙膜上，去除气泡。
（ 6）把一叠约 5 ~ 10cm高同滤纸大小一样的吸水纸放置在滤纸上，在吸水纸上再放一块玻璃板和约 500g的重物。
（ 7） 上述程序就绪,RNA转移即开始进行,
需持续 18 ~ 24小时 。 如果吸水纸过于潮湿,应换新的吸水纸 。
（ 8）转移结束后，揭去凝胶上方的吸水纸和滤纸，取出尼龙膜，不必冲洗、浸泡，转移面朝上置一张滤纸上晾干。将膜夹在两张滤纸中间,80℃ 干烤固定 1 ~
2小时，封入塑料袋中保存待用。
2,真空转移法
（ 1） 凝胶的预处理：具体程序同毛细管洗脱法 。
（ 2） 真空转移槽预处理：常规去污剂清洗,三蒸水漂洗数次,再用 DEPC处理的三蒸水冲洗数次后备用 。
（ 3） 在转移槽的支持网上置放经 2×
SSC湿润过的新华二号滤膜二张,去除支持网与滤膜间的气泡 。
（ 4） 裁剪一张尼龙膜,每边应比凝胶大 1 ~ 1.5cm,于 2× SSC中浸泡 20分钟,
平放在滤纸上,去除所有气泡 。
（ 5） 选取合适大小的真空垫圈 （ 每边略小于凝胶 1 ~ 1.5cm）,覆盖住尼龙膜,调整尼龙膜的位置,使其处于真空垫圈的中间 。
（ 6） 将凝胶放置到真空垫圈上,检查凝胶四边,要与垫圈严密重叠 。 排除所有气泡 。
（ 7） 加上上框,固定真空垫圈 。 打开真空泵,
调整到 6 ~ 13kPa的压力 。
（ 8） 小心加入 20× SSC溶液覆盖凝胶,
持续转移 3小时 。
（ 9）转移结束，依次移去上框、剩余的 20× SSC、凝胶及真空垫圈，取出尼龙膜，不要浸泡或冲洗，转移面朝上放在滤纸上晾干。将膜夹在两层滤纸中间，
80℃ 干烤固定 1 ~ 2小时，封入塑料袋中保存待用。
（ 三 ） 预杂交,杂交,洗膜和放射自显影
按 α-32 P 标记 DNA探针的斑点杂交方法进行 。
（四）分析结果：根据曝光显示的条带，
对照 RNA分子量标准参照物条带的迁移距离图，即可查出凝胶电泳中相应的
RNA位置，从而知道基因转录的 RNA的大小。利用自动光密度扫描仪扫描曝光的条带，计算条带的积分光密度值，以内参照 RNA条带的积分光密度为校正值，
可以确定不同样品基因转录的表达强度。
五,原位杂交
[原理 ]
原位杂交 （ in situ hybridization,ISH） 是将分子杂交与组织化学相结合的一项技术,也称原位 杂 交 组 织 化 学 （ in situ hybridization
histochemistry,ISSH） 。 它是利用标记的 DNA
或 RNA为探针,在组织,细胞及染色体上检测特异的 DNA或 RNA序列的杂交技术 。 其基本原理是含互补顺序的标记 DNA或 RNA片段即探针,
在适宜的条件下与细胞内特定的 DNA或 RNA形成稳定的杂交体。根据所用的探针和靶核酸的不同，原位杂交可分为 DNA-DNA杂交,DNA-
RNA杂交和 RNA-RNA杂交三类。根据探针的标记物是否能直接被检测，原位杂交又可分为直接法和间接法两类。直接法指用放射性同位素、荧光素或一些酶标记的探针与组织细胞内靶核酸所形成的杂交体可分别通过放射自显影、
荧光显微术或显色的酶促反应等直接检测 。 间接法指用半抗原标记探针,而探针与组织细胞内靶核酸形成的杂交体则通过免疫组织化学法对半抗原的定位间接地显示 。
本节主要介绍用 α-32P标记 DNA探针检测冰冻组织切片中 DNA及以地高辛标记 DNA探针检测石蜡包埋组织切片中 DNA的原位杂交方法 。
[试剂 ]
1,0.2mol/L HCL,1.72ml 浓 HCL,加
ddH2O至 100ml。
2,0.2%Triton X-100 — 0.1mol/L PBS,
1000ml 0.1mol/L PBS 液中加入 Triton X-100
2ml,混匀,高压灭菌 。
3,蛋白酶 K溶液,
1 mol/L Tris-HCl（ pH 8.0） 10ml
0.5mol/L EDTA ( pH 8.0） 10ml
加灭菌水至 100ml
使用前加入蛋白酶 K储存液 （ 0.5mg/ml,-20℃
保存 ）,使蛋白酶 K的终浓度为 1μg/ml 。
4,4%多聚甲醛 — 0.1mol/L PBS(pH 7.4)：称取 40g多聚甲醛,置于三角烧瓶中,加入 500 ~
800 ml 0.1mol/L PBS (pH 7.4）,加热至 60℃ 左右,持续搅拌使粉末完全溶解,常需滴加少许
1mol/L NaOH才能使溶液清亮,再加 0.1mol/L
PBS至 1000 ml,充分混匀 。
5,预杂交液
50%去离子甲酰胺
2× SSC
10%硫酸葡聚糖
5× Denhardt溶液
0.5mg/ml变性鲑鱼精 DNA
6,α-32P标记的 DNA探针
7,地高辛标记的 DNA探针
8,缓冲液 Ⅰ,
顺丁烯二酸 （ 马来酸 ） 0.1 mol/L
NaCL 0.15 mol/L
用 10mol/L NaOH将 pH调至 7.5（ 20℃ ）,
高压灭菌后备用 。
9,缓冲液 Ⅱ
先制备阻断剂储存液；取试剂盒中阻断剂按 10%（ W/V)加入缓冲液 Ⅰ,混匀,
用微波炉加热使其完全溶解,高压消毒后 4℃ 或 -20℃ 保存 。 取上述 10%的阻断剂储存液用缓冲液 Ⅰ 按 1,10稀释即制成缓冲液 Ⅱ 。
10,缓冲液 Ⅲ [ pH9.5（ 20℃ ） ]
Tris-Cl 100mmol/L
NaCl 100mmol/L
MgCl2 50mmol/L
11,缓冲液 Ⅳ [pH8.0(20℃ )]
Tris-Cl 10mmol/L
EDTA 1 mmol/L
12,底物显色液
缓冲液 Ⅲ 15ml + 52..5μl BCIP + 67.5μl NBT
[α-32P标记 DNA探针的原位杂交 ]
（ 一 ） 冰冻切片预处理
1,新鲜取材组织置液氮冷冻的异戊烷中 。
2,恒冷箱切片 （ 2 ~ 15μm）,置预处理的玻片上 。
3,4%多聚甲醛室温下固定 15 ~ 60分钟 。
4,PBS洗 2× 10分钟,43℃ 烤片过夜 。
5,0.2mol/L HCl 室温作用 10分钟,
0.1%~0.3%Triton X-100作用 15 ~ 30分钟 。
6,0.2%甘氨酸的 PBS室温作用 10分钟 。
7,蛋白酶 K 1μg/ml 37℃ 孵育 15 ~ 30分钟 。
8,0.2%甘氨酸的 PBS室温作用 10分钟 。
9,PBS-5mmol/L MgCl2洗 2× 10分钟 。
10,逐级酒精脱水,空气干燥或直接
37℃ 烤干保存 。
（ 二 ） 预杂交
1,切片用 2× SSC 浸泡 15分钟 。 再用
4× SSC 配制 （ V/V） 的 50%去离子甲酰胺 37℃ 孵育 15分钟 。
2,每张切片加预杂交液 20μl,杂交温度下 （ 如 42℃ ） 孵育 30分钟 ~ 2小时 。
（ 三 ） 杂交
吸弃预杂交液,每张切片加杂交液 20μl
（ 含 0.5ng/μl α-32P标记 DNA探针 ）,加盖硅化的盖玻片 。 玻片放置湿盒中,
95℃ ~100℃ 变性 10分钟 。 取出反应盒,
立即入冷水中放置 15分钟,再转入 42℃
温箱中杂交 12 ~ 18 小时,不要超过 24小时 。
（ 四 ） 洗涤
杂交完毕,于 2× SSC溶液中轻轻去除盖玻片 。
2× SSC洗涤,室温,1~ 2 分钟；
1× SSC — 50%去离子甲酰胺洗涤,
37℃,2× 10分钟；
0.1× SSC 洗涤,40℃,2× 30分钟 。
（ 五 ） 同位素标记探针显色法
1,暗室中将分装的核乳胶溶液 （ 约
10ml） 小瓶置 45 ℃ 水浴中浸泡至少 1小时,
使核乳胶完全熔成液态 。
2,组织切片垂直浸入熔化的核乳胶液中 1分钟,使核乳胶均匀流布在标本上
（ 垂直进入和垂直提出的速度要均匀,
提出后拭去背面及下端的核乳胶 ） 。
3,暗室中切片于 45℃ 电热板上,干燥 1
~ 2小时 。
4,切片装入暗盒内,周围以胶带封固,
4℃ 曝光 （ 3H标记探针 2 ~ 8周,35S标记探针 1 ~ 4周,32P标记探针 7~10天 ） 。
5,取出切片暗盒,室温放置至少 1小时 （ 勿启封 ）,使其缓慢回升至室温 。
6,在暗室中 （ 可留安全灯 ） 将切片置入
Kodax19显影液 3 ~ 5分钟,水冲洗片刻后,
置 Kodax F24定影液中 3 ~ 5分钟 （ 水温,
显影液及定影液温度最好为 18 ~ 20℃ ） 。
7,自来水冲洗载片 15 ~ 20分钟后,以
1%苏木精染液染 5 ~ 10分钟 。
8,盐酸酒精中提插 2下,再用自来水冲洗 5 ~ 10分钟返蓝 。
9,0.5% ~ 1%伊红染液复染 1分钟；
70%,80%,95%,100%系列乙醇脱水；
二甲苯透明,树脂胶封片,光镜检查 。
（ 六 ） 观察结果
阳性标记物呈黑色颗粒位于蓝染的细胞核或红染的细胞质内 。
[地高辛标记 DNA探针的原位杂交 ]
（ 一 ） 石蜡组织切片预处理
1,43℃ 烤片过夜,75℃ 烤 10分钟熔化石蜡。趁热浸入 37℃ 二甲苯中 30分钟，
再转入新鲜二甲苯中 10分钟。逐级酒精入水（ 100%,95%,,90%,80%,,
70%各 5分钟 ），再用甲醇洗 2 × 5分钟 。
2,0.2mol/L HCl 室温作用 10分钟,0.1%
~ 0.3%Triton X-100作用 15 ~ 30分钟,含
0.2%甘氨酸的 PBS室温作用 15分钟 。
3,1μg/ml蛋白酶 K 37℃ 孵育 15 ~ 30分钟 。
含 0.2%甘氨酸的 PBS室温作用 10分钟 。
PBS-5mmol/L MgCl2洗 2× 10分钟 。
4,4%多聚甲醛室温下固定 15分钟 。 PBS-
5mmol/L MgCl2洗 2× 15分钟 。
5,逐级酒精脱水 （ 70%,80%,90%,95%、
100%各 5分钟 ）,空气干燥或直接 37℃ 烘干保存 。
（ 二 ） 预杂交,杂交
参见 α-32P标记 DNA探针的原位杂交,只是地高辛标记探针的浓度为 2.5ng/μl。
（ 三 ） 洗涤
杂交完毕,于 2× SSC溶液中轻轻去除盖玻片 。
2× SSC洗涤,室温,1~ 2 分钟；
2× SSC 洗涤,40℃,4× 5分钟；
0.1× SSC洗涤,40℃,2× 30分钟；
缓冲液 Ⅰ 洗涤,室温 2分钟,振摇；
缓冲液 Ⅱ 洗涤，室温 30分钟，振摇。
（ 四 ） 信号检测
1,擦去组织周围的缓冲液,加碱性磷酸酶标记的抗地高辛抗体 （ 工作浓度为 1,500~1：
5000,用缓冲液 Ⅱ 稀释 ） 室温下孵育 2小时 。
Boehringer Mannheim提供的抗体,孵育时可在抗体中加 1%的正常羊血清,以减低背景 。
2,缓冲液 Ⅰ 洗涤,室温,2× 15分钟 。
3,缓冲液 Ⅲ 洗涤,室温,3分钟 。
4,擦去组织周围的缓冲液,加显色液,
室温下避光显色 2小时至过夜 。 可在显微镜下检查显色反应,阳性反应呈深兰色 。
当获得满意的反应结果后,即可终止反应 。
5、缓冲液 Ⅰ 洗涤，室温,5分钟。
6,缓冲液 Ⅳ 洗涤,室温,2分钟 。
7,封片,光镜检查 。
（ 六 ） 观察结果
在细胞核或细胞浆内出现蓝紫色杂交信号为阳性 。
