第五章 环境质量控制
实验动物质量控制
?遗传质量控制
?微生物质量控制
?环境质量控制
?营养质量控制
第一节 环境因素对实验动物的影响
一、实验动物环境控制的重要性
实验动物几乎终身被限制在一个极其有
限的环境范围内生活，这种环境就成了实验
动物赖以生存的条件。动物实验在实验前和
实验中控制各种环境因素十分重要。甚至可
以说没有环境控制就没有动物实验。
genotype基因型
发育环境
developmental
phenotype表现型
周围环境
proximate
dramatype 演出型
1959年 Russell和 Burch提出的
影响实验结果的遗传和环境因素
动物对实验处理的反应可用以下公式表示,
R = （ A+B+C）× D + E
R,实验动物的总反应
A,动物种的共同反应
B,品种品系特有的反应
C,个体反应（个体差异）
D,环境影响
E,实验误差
环境因素与动物的总反应呈正相关，要尽量
减少 D的变化，排除实验处理以外的影响。
二、实验动物环境因素的分类
1、气候因素：温度、湿度、气流、风速等；
2、理化因素：氧、二氧化碳、粉尘、臭味、
噪音、照度、杀虫剂、消毒剂、有害化
学物质等；
3、居住因素：房屋、笼具、垫料等；
4、营养因素：饲料、水等；
5、生物因素,
同种生物因素：社会地位、势力范围、咬斗
和饲养密度等
异种生物因素：微生物、人和其它动物的关
系
环境对实验动物质量和动物试验结果
的影响是多因素联合作用的结果。多种因
素是共存的。所以在论述实验动物的环境
时，应该按复合环境（ environmental
complex)状态加以考虑。
三、各种环境因素对实验动物质量和动物试验结
果的影响
1、温度,
?最适宜温度 20-25℃,温差,3或 4℃
?温度对动物的影响,
? 新陈代谢：低温时新陈代谢增加，摄食增加
? 散热：除灵长类，其他动物汗腺不发达或无汗
腺，高温时散热困难，难以维持体温恒定
? 脏器重量：负相关
? 生殖：高温时雄性睾丸萎缩，精子活力下降；
雌性动物性周期紊乱，泌乳下降
? 对动物实验的反应性
不同温度对药物 LD50的影响 (mg/kg)
----------------------------------------
------------
药物 15.5℃ 26.7℃
----------------------------------------
--------------
苯异丙氨 197.0 90.0
盐酸脱氧麻黄碱 111.0 33.2
麻黄碱 477.1 565.0
表 4-1 不同环境温度时戊巴比妥钠（ 95mg/kg）
腹腔注射导致大鼠死亡率比较
环境温度 (℃ ) 给药动物数 (只 ) 死亡动物数 (只 ) 死亡率 (%)
12 20 20 100
14 20 20 100
16 20 20 100
18 20 10 50
20 20 10 50
22 20 10 50
24 20 10 50
26 20 7 35
28 20 6 30
30 20 11 55
32 20 16 80
? 实验动物的温度标准范围,
2、湿度,
?相对湿度,实际水蒸气分压力
相对湿度 （ %） = ------------------ × 100%
饱和水蒸气分压力
适宜的相对湿度是 40%--70%。
高温高湿导致机体蒸发散热受阻。高湿利于
微生物繁殖和传播。
湿度过低可导致粉尘飞扬，而微生物主要附
着在粉尘上，动物室内变态反应原的含量随湿度
的下降而上升。
低湿，散热增加，产热增加，摄食增加
低湿，大鼠环尾症
3,气流与风速
? 换气次数，气流速度，压强梯度
? 气流速度和散热正相关，实验动物体表面积与
体重的比值较大，对气流速度更敏感。 气流速
度过大或气流直吹，动物体表散热过大。气流速度
小，散热慢。 0.1-0.2m/s
?换气次数，洁净程度越高，要求换气次数越多。
屏障环境,10-20次 /h 隔离环境,20-50次 /h,
?压强梯度：洁净区高于污染区
?合理组织气流和风速可调节室内温度和湿度，又
可降低室内粉尘和有害气体污染，控制传染病的流
行。
4、光照
?工作照度 150—300lx
?动物照度 15－ 20lx
?明暗交替时间 12/12或 10/14h
照度对动物的生殖生理和行为活动有较
大影响
强光长时间照射引起角膜退行性变化
5、噪声
?60dB以下
音域，人 1000~2000Hz,小鼠
1000~5000Hz。
引起小鼠听力性痉挛。
对生殖影响较大，如豚鼠流产。
引起动物呼吸、心跳、血压、肾上腺皮质
激素等生理指标变化。
6、空气洁净状况
?气体污染,氨 14mg/m3
有害气体，氨、甲基硫醇、硫化氢等
? 颗粒污染,100级,10000级,100000级
美国宇航局标准，每立方英尺空气中直径 0.5微米
以上粒子的个数。
粉尘颗粒，是变应原，还是微生物的主要载体。
? 落下菌数,0（隔离环境）,3（屏障环
境），或 30个 /皿（普通环境）
在不饲养动物的状态下每 5～ 10m2放置 1
个直径 9cm的血琼脂培养皿，暴露 30min
培养 48h的菌落数。
7、生物因素
?动物社会因素和动物饲养密度
?微生物
?其它动物
?实验人员
? Male mice will fight
when first co-mingled
in a cage,and they
need to be observed
very closely during
this time of
establishing a social
dominance hierarchy
within the group,
Weak and non-
aggressive animals
might be injured or
killed if not removed
from the cage,
8、居住因素
包括实验动物室的建筑、饲养笼具、垫
料、饮水器和给食器等。
动物试验设施环境指标,﹝ 以屏障系统小鼠为例 ﹞
温度,20~25℃ 换气次数,10~20 次 /h
日温差,≤ 3 ℃ 气流速度,0.1~0.2 m/s
相对湿度,40~70% 压强梯度,20~50 Pa
噪声,≤ 60dB 空气洁净度,10000级
氨浓度,≤ 14 mg/m3 落下细菌数,≤ 3个 /皿
照度,（工作） 150~300 lx （ 动物） 15~20 lx
昼夜明暗交替时间,12/12或 10/14 小时
密度（ >20g):面积 0.01m2,高度 0.15m
第二节 实验动物设施
一、实验动物设施
laboratory animal facility,LAF
是进行实验动物饲养、保种维持、生产、
实验研究、试验等设施的总称。包括实验动
物繁育、生产设施和动物实验设施。
二、实验动物环境设施的分类
实验动物设施根据对饲养动物的空气
净化程度分为三类。
?开放系统 (open system)
?屏障系统 (barrier system)
?隔离系统 (isolation system)
实验动物中心屏障环境特点,
? 恒温（ 20～ 26）恒湿（ 40％～ 70％）
? 足够的换气次数（ 10～ 20次 /小时）保证有害气
体浓度降低到最小
? 正向梯度压差（ 20～ 50)使屏障外污染源不能进
入
? 万级空气洁净度保证空气洁净
? 适合的动物照度 (15~20)和对时明暗交替
（ 12h/12h)符合动物生活习性。
? 11楼 IVC系统为动物提供更好的保护。
屏 障 系 统
实验动物垫料
屏 障 系 统
IVC
Individually Ventilated Cages
IVC的特点
? IVC(Individually
Ventilated Cages)
是独立通风笼盒的简
称,它的特点是具有一
定的密闭性,同时让经
HEPA过滤器的洁净
空气流入盒内,使盒内
保持正压,减少了可能
的感染来源,适合于饲
养 SPF级动物,以及一
些免疫缺陷动物
屏 障 系 统 层流架
隔 离 系 统
隔离器的基本构造示意图
实验动物设施的监控
? 监控内容
温度
湿度
压差
人员进出情况
环境级别和动物级别的对应关系
动物级别 环境级别 (洁净度，落下
菌 )
普通动物 开放系统 (___,30)
清洁动物 屏障系统 (万级,3)
SPF动物 屏障系统 (万级,3)
无菌动物
或悉生动物 隔离系统 (百级,0)
三、特殊动物实验设施
?感染动物实验设施
?放射性同位素动物实验设施 (RI)
?特殊化学物质动物实验设施
1、感染动物设施
是指使用病原体对动物进行实验感染
的设施。此种设施除备有通常动物设施要
求外，还必须具备防止由动物传染人，动
物相互间的交叉感染，动物向设施外感染
的结构和功能。
此类设施设计的目的是防止生物性危
险和有害因素向动物实验设施和外界的污
染。目前通常采用物理学隔离，主要是在
气密性结构内采用负压通风，以达到防止
气溶胶扩散污染的目的。
?NIH,P1,P2,P3,P4
?美国疾病管理中心, BSL1,BSL2,BSL3，
BSL4,
?我国 2004.5.1颁布,10.1实施,实验室生物
安全通用要求》国家标准,
一级,对健康成年人已知无致病作用的微生物
二级,对人或环境具有中等潜在危害的微生物
三级,通过呼吸途径使人传染上严重的甚
至是致死疾病的致病微生物及其毒素，
通常已有预防传染的疫苗。艾滋病病毒
的研究 (血清学实验除外 )应在三级生物安
全防护实验室中进行。
四级,对人体具有高度的危险性，通过气
溶胶途径传播或传播途径不明，目前尚
无有效的疫苗或治疗方法的致病微生物
及其毒素。以及上述情况类似的不明微
生物,
第三节 屏障系统管理
一、人流路线
二、物流路线
三、消毒与灭菌
?高压锅,121℃, 0.11Mpa,30分钟
132 ℃, 0.21Mpa,15分钟
?传递窗：紫外线，表面消毒,30分钟
?渡槽,0.1%新洁尔灭浸泡 4小时
?Co60照射
?2%过氧乙酸喷雾
?高锰酸钾、福尔马林熏蒸
四、废弃动物处理
深埋或焚烧
实验动物中心可以提供的
实验条件,
? 10楼南：开放环境，饲养
普通级猴
? 10楼北：屏障环境，饲养
清洁级大、小鼠
? 11楼南：屏障环境，饲养
SPF级小鼠，大鼠
引进动物进入清洁级屏障动
物房
? 从外面引进的动物必须有
与其适用范围相符的实验
动物生产许可证,同时必须
附带动物的品系、性别、
年龄等信息经实验动物中
心工作人员审查后方可准
备进入动物房
? 动物运输时必须有合
格的包装箱,清洁级及
以上动物包装箱必须
以高效滤膜封闭窗口，
包装箱以胶带封口，
封口破损或滤膜破损
者不得传入屏障系统。
? 将检查合格的动物包装
箱在外准备间以 70％酒
精棉球或 5%碘伏仔细
擦拭表面,将包装箱放入
灭菌通道进行喷雾消毒
或紫外线消毒
? 在内准备间打开灭菌通道
的门 → 在门口拆开包装箱
→ 轻轻提起鼠尾根部，放
入准备好的盒子中，盖好
盖子 → 动物包装箱仍退回
灭菌通道 → 将刚装了动物
的笼盒放在架子上 → 并填
写、悬挂卡片，加饲料，
饮水 → 从外准备间打开灭
菌通道，取出动物包装箱。
注意,
? 新引进动物应在单独房间，单独笼架饲养
一段时间,待观察健康无病后再移入其它房
间
? 不得向屏障动物房内传入不符合相应的实
验动物生产许可证的动物 !
实验用品和器具进出清洁级屏
障动物房
? 用 70%酒精或 5 %碘伏仔细擦拭消毒物品
表面紫外灯照射 15min 或直接喷雾消毒
? 手术器械可经高压消毒或经消毒液中浸泡
后在紫外灯下照射 15min传入
? 小型仪器经灭菌通道喷雾消毒后传入
IVC的使用要点
? 对 IVC中的动物进行的一切工
作均在动物超净工作台中进行
? 使用超净工作台前 30分钟用
70%酒精喷雾工作站内表面，
同时放入经表面消毒的各种灭
菌物料和实验用品，并打开紫
外灯和风机
? 用 70%酒精喷雾工作车、双
手手套和 IVC的外表面，将笼
盒移入工作台后进行换窝，喂
饲，喂水，实验等工作
物品进出 SPF动物实验室
? 所有物品在经过进入屏障系统时的一次消
毒后,在进入超净工作台时必须经过酒精喷
雾或紫外线照射 15min再次消毒。
? 实验用品和器具在实验结束后可经内准备
间从传递窗或灭菌通道传出，也可经缓冲
间 Ⅲ 出屏障系统
动物实验废弃物品的处理
? 垫料等废弃物与动物笼盒一起从
缓冲间 Ⅲ 出系统
? 注射器等尖锐物品套上套子后再
放入垃圾桶,以防刺伤工作人员
? 屏障内无排水系统,液体废弃物请
传出系统后再处理
? 废弃的动物包装盒从灭菌通道出
系统
? 口罩、手套、帽子、鞋套为一次
性物品,用过后就应丢弃,灭菌工
作服可放在一更,中心工作人员会
对其进行处理
? Ethical and Scientific Issues,
Pain & Distress
? Stress has been defined as "the
effect produced by external (i.e,
physical or environmental)
events or internal (i.e,
physiologic or psychologic)
factors,referred to as stressors,
which induce an alteration in an
animal's biologic equilibrium
[NRC,1992].” Not all stress is
harmful and may actually be
beneficial,such as pair or group
housing animals,If the animal
can adapt to the stress then it
will return to a state of comfort,
? The Three Rs,
?
? Replacement,Substitution of non-
living material (i.e,tissue cultures) or
methods (i.e,computer modeling) for
animals,or substitution of a lower
species,which might be less sensitive
to pain and distress,for a higher
species,For example – using brain
tissue slices in culture for studying
neuro-epileptic agents,
Reduction,Reductions in the
numbers of animals used to obtain
information as achieved by statistical
analysis,
Refinement,Decrease in the
incidence or severity of pain and
distress in those animals that are used,
For example – using inhalant
anesthesia instead of injectable so
that animals recover consciousness
more rapidly,
实验动物质量控制
?遗传质量控制
?微生物质量控制
?环境质量控制
?营养质量控制
第一节 环境因素对实验动物的影响
一、实验动物环境控制的重要性
实验动物几乎终身被限制在一个极其有
限的环境范围内生活，这种环境就成了实验
动物赖以生存的条件。动物实验在实验前和
实验中控制各种环境因素十分重要。甚至可
以说没有环境控制就没有动物实验。
genotype基因型
发育环境
developmental
phenotype表现型
周围环境
proximate
dramatype 演出型
1959年 Russell和 Burch提出的
影响实验结果的遗传和环境因素
动物对实验处理的反应可用以下公式表示,
R = （ A+B+C）× D + E
R,实验动物的总反应
A,动物种的共同反应
B,品种品系特有的反应
C,个体反应（个体差异）
D,环境影响
E,实验误差
环境因素与动物的总反应呈正相关，要尽量
减少 D的变化，排除实验处理以外的影响。
二、实验动物环境因素的分类
1、气候因素：温度、湿度、气流、风速等；
2、理化因素：氧、二氧化碳、粉尘、臭味、
噪音、照度、杀虫剂、消毒剂、有害化
学物质等；
3、居住因素：房屋、笼具、垫料等；
4、营养因素：饲料、水等；
5、生物因素,
同种生物因素：社会地位、势力范围、咬斗
和饲养密度等
异种生物因素：微生物、人和其它动物的关
系
环境对实验动物质量和动物试验结果
的影响是多因素联合作用的结果。多种因
素是共存的。所以在论述实验动物的环境
时，应该按复合环境（ environmental
complex)状态加以考虑。
三、各种环境因素对实验动物质量和动物试验结
果的影响
1、温度,
?最适宜温度 20-25℃,温差,3或 4℃
?温度对动物的影响,
? 新陈代谢：低温时新陈代谢增加，摄食增加
? 散热：除灵长类，其他动物汗腺不发达或无汗
腺，高温时散热困难，难以维持体温恒定
? 脏器重量：负相关
? 生殖：高温时雄性睾丸萎缩，精子活力下降；
雌性动物性周期紊乱，泌乳下降
? 对动物实验的反应性
不同温度对药物 LD50的影响 (mg/kg)
----------------------------------------
------------
药物 15.5℃ 26.7℃
----------------------------------------
--------------
苯异丙氨 197.0 90.0
盐酸脱氧麻黄碱 111.0 33.2
麻黄碱 477.1 565.0
表 4-1 不同环境温度时戊巴比妥钠（ 95mg/kg）
腹腔注射导致大鼠死亡率比较
环境温度 (℃ ) 给药动物数 (只 ) 死亡动物数 (只 ) 死亡率 (%)
12 20 20 100
14 20 20 100
16 20 20 100
18 20 10 50
20 20 10 50
22 20 10 50
24 20 10 50
26 20 7 35
28 20 6 30
30 20 11 55
32 20 16 80
? 实验动物的温度标准范围,
2、湿度,
?相对湿度,实际水蒸气分压力
相对湿度 （ %） = ------------------ × 100%
饱和水蒸气分压力
适宜的相对湿度是 40%--70%。
高温高湿导致机体蒸发散热受阻。高湿利于
微生物繁殖和传播。
湿度过低可导致粉尘飞扬，而微生物主要附
着在粉尘上，动物室内变态反应原的含量随湿度
的下降而上升。
低湿，散热增加，产热增加，摄食增加
低湿，大鼠环尾症
3,气流与风速
? 换气次数，气流速度，压强梯度
? 气流速度和散热正相关，实验动物体表面积与
体重的比值较大，对气流速度更敏感。 气流速
度过大或气流直吹，动物体表散热过大。气流速度
小，散热慢。 0.1-0.2m/s
?换气次数，洁净程度越高，要求换气次数越多。
屏障环境,10-20次 /h 隔离环境,20-50次 /h,
?压强梯度：洁净区高于污染区
?合理组织气流和风速可调节室内温度和湿度，又
可降低室内粉尘和有害气体污染，控制传染病的流
行。
4、光照
?工作照度 150—300lx
?动物照度 15－ 20lx
?明暗交替时间 12/12或 10/14h
照度对动物的生殖生理和行为活动有较
大影响
强光长时间照射引起角膜退行性变化
5、噪声
?60dB以下
音域，人 1000~2000Hz,小鼠
1000~5000Hz。
引起小鼠听力性痉挛。
对生殖影响较大，如豚鼠流产。
引起动物呼吸、心跳、血压、肾上腺皮质
激素等生理指标变化。
6、空气洁净状况
?气体污染,氨 14mg/m3
有害气体，氨、甲基硫醇、硫化氢等
? 颗粒污染,100级,10000级,100000级
美国宇航局标准，每立方英尺空气中直径 0.5微米
以上粒子的个数。
粉尘颗粒，是变应原，还是微生物的主要载体。
? 落下菌数,0（隔离环境）,3（屏障环
境），或 30个 /皿（普通环境）
在不饲养动物的状态下每 5～ 10m2放置 1
个直径 9cm的血琼脂培养皿，暴露 30min
培养 48h的菌落数。
7、生物因素
?动物社会因素和动物饲养密度
?微生物
?其它动物
?实验人员
? Male mice will fight
when first co-mingled
in a cage,and they
need to be observed
very closely during
this time of
establishing a social
dominance hierarchy
within the group,
Weak and non-
aggressive animals
might be injured or
killed if not removed
from the cage,
8、居住因素
包括实验动物室的建筑、饲养笼具、垫
料、饮水器和给食器等。
动物试验设施环境指标,﹝ 以屏障系统小鼠为例 ﹞
温度,20~25℃ 换气次数,10~20 次 /h
日温差,≤ 3 ℃ 气流速度,0.1~0.2 m/s
相对湿度,40~70% 压强梯度,20~50 Pa
噪声,≤ 60dB 空气洁净度,10000级
氨浓度,≤ 14 mg/m3 落下细菌数,≤ 3个 /皿
照度,（工作） 150~300 lx （ 动物） 15~20 lx
昼夜明暗交替时间,12/12或 10/14 小时
密度（ >20g):面积 0.01m2,高度 0.15m
第二节 实验动物设施
一、实验动物设施
laboratory animal facility,LAF
是进行实验动物饲养、保种维持、生产、
实验研究、试验等设施的总称。包括实验动
物繁育、生产设施和动物实验设施。
二、实验动物环境设施的分类
实验动物设施根据对饲养动物的空气
净化程度分为三类。
?开放系统 (open system)
?屏障系统 (barrier system)
?隔离系统 (isolation system)
实验动物中心屏障环境特点,
? 恒温（ 20～ 26）恒湿（ 40％～ 70％）
? 足够的换气次数（ 10～ 20次 /小时）保证有害气
体浓度降低到最小
? 正向梯度压差（ 20～ 50)使屏障外污染源不能进
入
? 万级空气洁净度保证空气洁净
? 适合的动物照度 (15~20)和对时明暗交替
（ 12h/12h)符合动物生活习性。
? 11楼 IVC系统为动物提供更好的保护。
屏 障 系 统
实验动物垫料
屏 障 系 统
IVC
Individually Ventilated Cages
IVC的特点
? IVC(Individually
Ventilated Cages)
是独立通风笼盒的简
称,它的特点是具有一
定的密闭性,同时让经
HEPA过滤器的洁净
空气流入盒内,使盒内
保持正压,减少了可能
的感染来源,适合于饲
养 SPF级动物,以及一
些免疫缺陷动物
屏 障 系 统 层流架
隔 离 系 统
隔离器的基本构造示意图
实验动物设施的监控
? 监控内容
温度
湿度
压差
人员进出情况
环境级别和动物级别的对应关系
动物级别 环境级别 (洁净度，落下
菌 )
普通动物 开放系统 (___,30)
清洁动物 屏障系统 (万级,3)
SPF动物 屏障系统 (万级,3)
无菌动物
或悉生动物 隔离系统 (百级,0)
三、特殊动物实验设施
?感染动物实验设施
?放射性同位素动物实验设施 (RI)
?特殊化学物质动物实验设施
1、感染动物设施
是指使用病原体对动物进行实验感染
的设施。此种设施除备有通常动物设施要
求外，还必须具备防止由动物传染人，动
物相互间的交叉感染，动物向设施外感染
的结构和功能。
此类设施设计的目的是防止生物性危
险和有害因素向动物实验设施和外界的污
染。目前通常采用物理学隔离，主要是在
气密性结构内采用负压通风，以达到防止
气溶胶扩散污染的目的。
?NIH,P1,P2,P3,P4
?美国疾病管理中心, BSL1,BSL2,BSL3，
BSL4,
?我国 2004.5.1颁布,10.1实施,实验室生物
安全通用要求》国家标准,
一级,对健康成年人已知无致病作用的微生物
二级,对人或环境具有中等潜在危害的微生物
三级,通过呼吸途径使人传染上严重的甚
至是致死疾病的致病微生物及其毒素，
通常已有预防传染的疫苗。艾滋病病毒
的研究 (血清学实验除外 )应在三级生物安
全防护实验室中进行。
四级,对人体具有高度的危险性，通过气
溶胶途径传播或传播途径不明，目前尚
无有效的疫苗或治疗方法的致病微生物
及其毒素。以及上述情况类似的不明微
生物,
第三节 屏障系统管理
一、人流路线
二、物流路线
三、消毒与灭菌
?高压锅,121℃, 0.11Mpa,30分钟
132 ℃, 0.21Mpa,15分钟
?传递窗：紫外线，表面消毒,30分钟
?渡槽,0.1%新洁尔灭浸泡 4小时
?Co60照射
?2%过氧乙酸喷雾
?高锰酸钾、福尔马林熏蒸
四、废弃动物处理
深埋或焚烧
实验动物中心可以提供的
实验条件,
? 10楼南：开放环境，饲养
普通级猴
? 10楼北：屏障环境，饲养
清洁级大、小鼠
? 11楼南：屏障环境，饲养
SPF级小鼠，大鼠
引进动物进入清洁级屏障动
物房
? 从外面引进的动物必须有
与其适用范围相符的实验
动物生产许可证,同时必须
附带动物的品系、性别、
年龄等信息经实验动物中
心工作人员审查后方可准
备进入动物房
? 动物运输时必须有合
格的包装箱,清洁级及
以上动物包装箱必须
以高效滤膜封闭窗口，
包装箱以胶带封口，
封口破损或滤膜破损
者不得传入屏障系统。
? 将检查合格的动物包装
箱在外准备间以 70％酒
精棉球或 5%碘伏仔细
擦拭表面,将包装箱放入
灭菌通道进行喷雾消毒
或紫外线消毒
? 在内准备间打开灭菌通道
的门 → 在门口拆开包装箱
→ 轻轻提起鼠尾根部，放
入准备好的盒子中，盖好
盖子 → 动物包装箱仍退回
灭菌通道 → 将刚装了动物
的笼盒放在架子上 → 并填
写、悬挂卡片，加饲料，
饮水 → 从外准备间打开灭
菌通道，取出动物包装箱。
注意,
? 新引进动物应在单独房间，单独笼架饲养
一段时间,待观察健康无病后再移入其它房
间
? 不得向屏障动物房内传入不符合相应的实
验动物生产许可证的动物 !
实验用品和器具进出清洁级屏
障动物房
? 用 70%酒精或 5 %碘伏仔细擦拭消毒物品
表面紫外灯照射 15min 或直接喷雾消毒
? 手术器械可经高压消毒或经消毒液中浸泡
后在紫外灯下照射 15min传入
? 小型仪器经灭菌通道喷雾消毒后传入
IVC的使用要点
? 对 IVC中的动物进行的一切工
作均在动物超净工作台中进行
? 使用超净工作台前 30分钟用
70%酒精喷雾工作站内表面，
同时放入经表面消毒的各种灭
菌物料和实验用品，并打开紫
外灯和风机
? 用 70%酒精喷雾工作车、双
手手套和 IVC的外表面，将笼
盒移入工作台后进行换窝，喂
饲，喂水，实验等工作
物品进出 SPF动物实验室
? 所有物品在经过进入屏障系统时的一次消
毒后,在进入超净工作台时必须经过酒精喷
雾或紫外线照射 15min再次消毒。
? 实验用品和器具在实验结束后可经内准备
间从传递窗或灭菌通道传出，也可经缓冲
间 Ⅲ 出屏障系统
动物实验废弃物品的处理
? 垫料等废弃物与动物笼盒一起从
缓冲间 Ⅲ 出系统
? 注射器等尖锐物品套上套子后再
放入垃圾桶,以防刺伤工作人员
? 屏障内无排水系统,液体废弃物请
传出系统后再处理
? 废弃的动物包装盒从灭菌通道出
系统
? 口罩、手套、帽子、鞋套为一次
性物品,用过后就应丢弃,灭菌工
作服可放在一更,中心工作人员会
对其进行处理
? Ethical and Scientific Issues,
Pain & Distress
? Stress has been defined as "the
effect produced by external (i.e,
physical or environmental)
events or internal (i.e,
physiologic or psychologic)
factors,referred to as stressors,
which induce an alteration in an
animal's biologic equilibrium
[NRC,1992].” Not all stress is
harmful and may actually be
beneficial,such as pair or group
housing animals,If the animal
can adapt to the stress then it
will return to a state of comfort,
? The Three Rs,
?
? Replacement,Substitution of non-
living material (i.e,tissue cultures) or
methods (i.e,computer modeling) for
animals,or substitution of a lower
species,which might be less sensitive
to pain and distress,for a higher
species,For example – using brain
tissue slices in culture for studying
neuro-epileptic agents,
Reduction,Reductions in the
numbers of animals used to obtain
information as achieved by statistical
analysis,
Refinement,Decrease in the
incidence or severity of pain and
distress in those animals that are used,
For example – using inhalant
anesthesia instead of injectable so
that animals recover consciousness
more rapidly,
